GEOLOGICA CARPATHICA

, APRIL 2019, 70, 2, 153–182

doi: 10.2478/geoca-2019-0009

www.geologicacarpathica.com

The Jurassic/Cretaceous boundary and high  

resolution biostratigraphy of the pelagic sequences  

of the Kurovice section (Outer Western Carpathians,  

the northern Tethyan margin)

ANDREA SVOBODOVÁ

1, 



, LILIAN ŠVÁBENICKÁ

2

, DANIELA REHÁKOVÁ

3

,  

MARCELA SVOBODOVÁ

1

, PETR SKUPIEN

4

, TIIU ELBRA

1

 and PETR SCHNABL

1

1

The

 

Czech Academy of Sciences, Institute of Geology, Rozvojová 269, 165 00 Prague, Czech Republic; 

 

 

asvobodova@gli.cas.cz, 

msvobodova@gli.cas.cz, elbra@gli.cas.cz, schnabl@gli.cas.cz

2

Czech Geological Survey, Klárov 131/3, 118 21 Prague, Czech Republic; lilian.svabenicka@geology.cz

3

Comenius University, Faculty of Natural Sciences, Department of Geology and Paleontology, Mlynská dolina G. Ilkovičova 6,  

842 15 Bratislava, Slovakia; daniela.rehakova@uniba.sk

4

Institute of Geological Engineering, VŠB — Technical University of Ostrava, 17. listopadu 15,  

708 33 Ostrava-Poruba, Czech Republic; petr.skupien@vsb.cz

(Manuscript received September 27, 2018; accepted in revised form March 12, 2019)

Abstract: Microfacies and high resolution studies at the Kurovice quarry (Czech Republic, Outer Western Carpathians) 

on calpionellids, calcareous and non-calcareous dinoflagellate cysts, sporomorphs and calcareous nannofossils, aligned 

with paleomagnetism, allow construction of a detailed stratigraphy and paleoenvironmental interpretation across  

the Jurassic/Cretaceous (J/K) boundary. The Kurovice section consists of allodapic and micrite limestones and marlstones.  

Identified standard microfacies types SMF 2, SMF 3 and SMF 4 indicate that sediments were deposited on a deep shelf 

margin (FZ 3), with a change, later, into distal basin conditions and sediments (FZ 1). The sequence spans a stratigraphic 

range from the Early Tithonian calcareous dinoflagellate Malmica Zone, nannoplankton zone NJT 15 and magnetozone 

M 21r to the late Early Berriasian calpionellid Elliptica Subzone of the Calpionella Zone, nannoplankton NK-1 Zone and 

M 17r magnetozone. The J/K boundary is marked by

 

a

 

quantitative increase of small forms of Calpionella alpina, the base 

of the Alpina Subzone (that corresponds to NJT 17b and M 19n.2n) and by the rare occurrence of Nannoconus wintereri. 

Palynomorphs include Early Berriasian terrestrial elements — non-calcareous dinoflagellate cysts Achomo sphaera 

 neptunii,  Prolixosphaeridium  sp.  A  and Tehamadinium evittii.  The depositional area for Kurovice was situated at  

the margin of the NW Tethys. The influence of cold waters from northern latitudes and potential  upwellings is highlighted 

by: 1) the high proportion of radiolarians and sponge spicules, 2) rare calpionellids represented mostly by hyaline forms, 

3) the absence of microgranular calpionellids — chitinoidellids, 4) the small percentage of the genera Nannoconus, 

 Polycostella and Conusphaera in nannofossil assemblages, as

 

compared to other sites in Tethys, 5) scarce Nannoconus 

compressus, which has otherwise been mentioned from the Atlantic area.

Keywords: Tithonian, Berriasian, calcareous and non-calcareous microfossils

, 

calcareous nannofossils, palynomorphs, 

magnetostratigraphy.

Introduction

Determining the Global Boundary Stratotype Section and 

Point (GSSP) for the Berriasian Stage in the Tethys has been 

the objective of elaborate research and discussions of the Ber-

riasian Working Group during the past several years. Tethys 

was the largest depositional area during Tithonian and Berria-

sian times that is available for study by diverse stratigraphic 

methods, namely lithostratigraphy, biostratigraphy (based on 

calpionellids, nannofossils, dinoflagellates, radiolarians, fora-

minifers, ammonites and belemnites), as well as by magne-

tostratigraphy, geochemistry and sequence stratigraphy 

 (Andreini et al. 2007; Houša et al. 2007; Michalík et al. 2009, 

2016; Casellato 2010; Lukeneder et al. 2010; Pruner et al. 

2010; Grabowski et al. 2010a, b; Grabowski 2011; Michalík  

&  Reháková 2011; Wimbledon et al. 2011, 2013; Petrova  

et al. 2012; Guzhikov et al. 2012; Lakova & Petrova 2013; 

López-Martínez et al. 2013, 2015; Schnabl et al. 2015; 

 Svobodová  &  Košťák  2016;  Hoedemaeker  et  al.  2016; 

Grabowski et al. 2017; Kietzmann 2017; Lakova et al. 2017; 

Wimbledon  2017;  Elbra  et  al.  2018a, b,  Kowal-Kasprzyk  & 

Reháková 2019).

Much research has been focused on the Jurassic/Cretaceous 

(J/K) boundary of the Western Carpathians (Grabowski & 

Pszczółkowski 2006; Grabowski et al. 2010b, 2013; Michalík 

et al. 2016; Skupien et al. 2016); and the Brodno section in 

Slovakia was chosen as a regional stratotype (Michalík et  

al. 1990, 2009; Houša et al. 1996, 1999). Marine strata at  

the locality of Kurovice were suggested as another possible 

J/K profile for multidisciplinary research. Reháková (in 

 

Eliáš et al. 1996) noted calpionellid zones ranging from  

the Late Tithonian Crassicollaria Zone to the Late Berriasian 

154

SVOBODOVÁ, ŠVÁBENICKÁ, REHÁKOVÁ, SVOBODOVÁ, SKUPIEN, ELBRA and SCHNABL

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Calpionellopsis Zone. However, the J/K boundary could not 

then be strictly determined. Recent bed-by-bed study confir-

med a similar calpionellid distribution, with a biozonation, 

and the J/K boundary to be precisely located (Svobodová et al. 

2017; Švábenická et al. 2017; Elbra et al. 2018a).

This work follows the Elbra et al. (2018a) paper, which pre-

sented the magnetostratigraphy of the Kurovice sequence, 

beds 1–148, compared to concise biostratigraphic data. The aim 

of this study is to provide detailed documentation of the biota 

in an extended succession (beds −29 to 148) and to compare 

the distribution of calpionellids, calcareous dinoflagellates, 

palynomorphs and calcareous nannofossils, with a focus on 

the biostratigraphic and paleoenvironmental interpretations. 

In addition, the work also includes the magnetostratigraphy of 

the lower part of the sequence (beds −1 to −29), which was not 

mentioned by Elbra et al. (2018a).

Geological setting

The Kurovice Quarry (49°16’25.0” N, 17°31’19.0” E; 260–

269 m a.s.l.) is located in the south-eastern part of the Czech 

Republic, 9 km NW from Zlín (Fig. 1). It is situated in  

the front of the Magura Group of nappes (Fig. 2) that represent  

a sig nificant regional unit of the Outer Western Carpathians 

(Švábenická et al. 1997; Pícha et al. 2006). In Tithonian  

and Berriasian times, this depositional area was situated on  

the nor thern margin of Tethys and was confined to the south 

by the Czorsztyn Ridge and the Silesian Cordillera (Golonka 

et al. 2006).

Limestone quarrying started in Kurovice during the first 

half of the 18

th

 century, and continued until 1997. In 1999,  

the area of the abandoned quarry was declared as a nature 

reserve due to its geological and paleontological significance, 

and for the protection of rare biota. The geological age of  

the quarry’s rocks described as the Kurovice Limestone 

(Glöckner 1841) has always been a subject of discussion.  

On the basis of finds of aptychi, a Jurassic age was assigned. 

Andrusov (1933, 1945) documented both a Jurassic and a Lower 

Cretaceous age for the deposits. 

The Kurovice Limestone is a sequence consisting of centi-

metre- to decimetre-scale micrite limestones alternating with 

whitish-grey allodapic limestones, silty limestones and marl-

stones, deposited on a deep shelf margin passing into deposi-

tion in distal basinal conditions (Vašíček & Reháková 1994). 

The formation’s thickness is estimated to be approximately 

120–150 m. 

Material and methods

Samples from the Kurovice section were taken in 2016 and 

2017. An almost 77 m thick sequence was recorded, numbered 

from  −29  to  148  and  sampled  for  paleomagnetic  and  geo-

chemical research (Fig. 3). The paleomagnetic methods emp-

loyed here have already been described in Elbra et al. (2018a).

Calcareous nannofossils

Calcareous nannofossils have been analy-

zed in 114 smear slides. These came from  

the size fraction of 1–30 µm, separated by  

a pro cess of decantation using 7 % solution of 

H

2

O

2

 (e.g., Švábenická 2012). In order to 

obtain the relative nannofossil abundances and 

semiquantitative data, 500 specimens were 

counted on each slide. Some samples did not 

provide many specimens, so the number of all 

nannofossils found on such slides was used  

as the basis for interpretation. Slides were 

observed under an Olympus BX51 and Nikon 

Microphot-FXA transmitting light micro-

scopes with immersion objectives of ×100 

magnifications. The identifications of species 

follow Bralower et al. (1989), Bown & Cooper 

(1989, 1998), Bown et al. (1998), Casellato 

(2010), and Nannotax website (Young et al. 

2013); and biostratigraphic data were inter-

preted with reference to the nannofossil zona-

tion of Casellato (2010). The smear slides are 

stored at the Institute of Geology of the Czech 

Academy of Sciences, v.v.i. (Department 

 

of Paleobiology and Paleoecology) and at  

the Czech Geological Survey in Prague.

Fig. 1. Simplified geological map of the Outer Western Carpathians. The Kurovice 

 section is marked with an arrow. 1 — Bohemian Massif, 2 — Carpathian Foredeep,  

3 — Vienna Basin, 4 — Žďánice-Subsilesian Unit, 5 — Silesian Unit, 6 — Fore magura 

Unit, 7 — Magura Group of Nappes, 8 — Outer Klippen Belt, 9 — Inner Klippen Belt. 

Simplified after Švábenická (2012).

155

J/K BOUNDARY AND HIGH RESOLUTION BIOSTRATIGRAPHY OF THE KUROVICE SECTION

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Microfacies, calcareous dinoflagellates and calpionellids 

Microfacies and calcareous microfossils — calpionellids and 

calcareous dinoflagellates were studied in 220 thin sections 

under a Leica DM 2500 transmitting light microscope and 

documented by the Axiocam ERc 5s camera in the Depart-

ment of Geology and Paleontology, Comenius University in 

Bratislava. The standard calpionellid zones of Remane et al. 

(1986) and Reháková & Michalík (1997) and calcareous dino-

flagellate succession of Nowak (1968) and Reháková (2000) 

were applied. Carbonate rocks were classified according to  

the Folk (1959) and Dunham (1962) schemes. Standard micro-

facies types (SMFs) and facies zones (FZs) were determined 

following Wilson (1975) and Flügel (2004).

Palynomorphs

A total of 24 samples were processed to concentrate  

the resistant palynological component using standard macera-

tion techniques, including treatment with hydrochloric (HCl) 

and hydrofluoric (HF) acids to remove carbonates and sili-

cates. The remaining inorganic fraction was removed by ace-

tolysis and HNO

3.

 Due to the rare appearance of palynomorphs, 

sieving was not used. The palynofacies analysis and photo-

documentation were carried out using Leica DM 2500 optical 

microscope (software Leica IM 50) with magnifications of 

200 –1000× (MS), and by Olympus BX60 optical microscope, 

SW NIS-Elements 3.1. The formalized non-calcareous dino-

flagellate taxa are fully referenced in Fensome & Williams 

(2004) and Fensome et al. (2009). The paly-

nological slides are stored in the Department 

of Paleobiology and Paleoecology of the Insti-

tute of Geology of the Czech Academy of 

Sciences, and Institute of Geological Engi-

neering VŠB — Technical University Ostrava.

Results

Calcareous nannofossils

In samples from Kurovice, calcareous nan-

nofossils are usually poorly preserved. Over-

growth and etching are extensive, making 

identification of some specimens difficult. 

Generally, nannofossil assemblages are cha-

racterized by the dominance of ellipsagelo-

sphae rids, making up more than 90 % of 

spe cimens.  The  genera  Conusphaera, Nanno­

conus and Polycostella are found in small 

numbers (Fig. 4). Other nannoliths and pla-

coiths are rare, fragmented and often cannot 

be identified.

Fig. 2. Probable paleogeographic position of the depositional area (Kurovice section 

marked by the red dot). After Michalík 2011, modified. Legend: white — dry land; light 

gray — epicontinental sea; gray — marine basins; bricks — carbonate platforms and 

basins; dark gray — oceanic bottom).

Fig. 3. The profile in the Kurovice quarry. A — location of the J–K boundary marked with black line. B — a detailed view of the middle part 

of the section.

156

SVOBODOVÁ, ŠVÁBENICKÁ, REHÁKOVÁ, SVOBODOVÁ, SKUPIEN, ELBRA and SCHNABL

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Fig. 4. Percentage share of selected nannofossil genera in the assemblages across the Kurovice section. Lithology after M. Bubík in Košťák  

et al. (2018), nannofossil zones (CNZ) by Casellato (2010).

157

J/K BOUNDARY AND HIGH RESOLUTION BIOSTRATIGRAPHY OF THE KUROVICE SECTION

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Calcarenites contain extremely poor nannofossil associa-

tions (Fig. 5A). Scarce nannofossil fragments (1–3 specimens 

per 10 fields of view of the microscope, FOM) are represented 

almost exclusively by ellipsagelosphaerids. Watznaueria div. 

spec. may total up to 80 % and Cyclagelosphaera margerelii 

up to 11 % of nannofossil assemblage. Micrite limestones con-

tain poorly preserved nannofossils with abundance ±1 up to 10 

specimens per 1 FOM (Fig. 5B). The associations comprise 

numerous specimens of the genera Watznaueria (Fig. 6S–AB) 

and Cyclagelosphaera (Fig. 6AC–AH) accompanied by rare 

specimens of Conusphaera (C. mexicana mexicana, C. mexi­

cana minor, Conusphaera sp. 1),  Polycostella beckmannii, 

Nannoconus spp., Zeugrhabdotus (Z. embergeri, Z. cooperi), 

and fragments of outer rims of the genera Retecapsa and 

Helenea. Specimens of W. barnesiae may comprise 70 % and 

C. margerelii up to 13 %. Marlstone interbeds contain highly 

abundant (10–20 up to ±50 specimens per FOM and more) 

diversified nannofossil assemblages (Fig. 5C). Although 

ellipsagelosphaerids still predominate quantitatively, abun-

dances of Watznaueria species (W. manivitiae, W. fossacincta, 

W. britannica, W. communis, W. cynthae, W. ovata) and Cycla­

gelosphaera (C. deflandrei, C. argoensis) increase. Specimens 

of genera Conusphaera (Fig. 7I–P), Nannoconus (Fig. 7S–AJ), 

Polycostella  (Fig. 7Q, R),  Retecapsa  (Fig. 6O, P),  Helenea 

(Fig. 6A–D),  Diazomatolithus  (Fig. 7B),  Zeugrhabdotus  

(Fig. 6I–L), Hexalithus (Fig. 7E, F) are present in higher quan-

tities than in calcarenites and micrite limestones. Generally, 

the composition of calcareous nannofossil assemblage in  

the studied material corresponds to the Tithonian and Early 

Berriasian age, compared with the previous studies (e.g., 

Michalík et al. 2009; Casellato 2010; Lukeneder et al. 2010; 

Svobodová & Košťák 2016). Selected calcareous nannofossil 

taxa are presented in Figs. 6 and 7. The distribution of all nan-

nofossil species is shown in Table 1, and a list of calca reous 

nannofossil taxa is given in Appendix.

Microfacies, calcareous dinoflagellates and calpionellids

The deposits contain selected bioclasts and allochems, such 

as calpionellids, radiolarians, globochaetes, saccocomids, fila-

ments, fragments of benthic organisms, quartz and lithoclasts. 

Calpionellids are generally rare and hyaline forms dominate. 

Calpionellids are not well preserved. Gradually in the over-

lying beds, they exhibit loricae with thinned walls, which are 

often damaged or have poorly preserved collars. Through  

the section, calcified radiolarians and sponge spicules deter-

mine the prevailing type of spiculite-radiolarian and radiola-

rian–spiculite microfacies. In the lowermost part of the section, 

cysts of dinoflagellates and crinoid fragments are locally  

a significant part of fossil assemblages. Microgranular chiti-

noidellid loricae were not found. On the basis of microfacies, 

calcareous dinoflagellate and calpionellid development, 

 

the Kuro vice succession is divided into several intervals (from 

the bottom to the top):

Beds −29 to −7 (~0 –7.7 m): Marly and slightly laminated, 

locally bioturbated limestones (mudstones), in some places 

with thin layers and laminae rich in a silt admixture and 

 silt-sized fragments of litho- and bioclasts, locally also silt-

stones. Further, biomicritic slightly bioturbated limestone of 

Fig. 5. Kurovice section, abundance of nannofossils in the particular 

types of rock. Fields of views in the microscope. A — calcarenite;  

B — micrite limestone; C — marlstone.

158

SVOBODOVÁ, ŠVÁBENICKÁ, REHÁKOVÁ, SVOBODOVÁ, SKUPIEN, ELBRA and SCHNABL

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Fig. 6. Kurovice section, calcareous nannofossils, Heterococcoliths. Photographs in cross polarized light, figures E, G, AE and AG in plane 

polarized light. A, B — Helenea staurolithina: A — sample 1t, B — sample 5b; C, D — Helenea chiastia, C — sample 142s, D — sample 107; 

E, F — Rhagodiscus nebulosus, sample 145; G, H — Umbria granulosa minor (fragment), sample 100 marlstone; I, J – Zeugrhabdotus fluxus, 

sample −6; K — Zeugrhabdotus cooperi, sample 1t; L — Zeugrhabdotus embergerii, sample 142s; M — Pickelhaube furtiva, sample 8/9;  

N — Biscutum ellipticum, sample 133/134; O — Retacapsa surirella, sample 132; P — Retacapsa cf. octofenestrata,  sample 133/134;  

Q, R — Speetonia colligata (specimen in 0

o

 and 30

o

), sample 133/134; S — Watznaueria barnesiae, sample 1t; T — Watznaueria communis, 

sample 94; U — Watznaueria fossacincta, sample 105b; V, W — Watznaueria britannica: V — sample 1t, W — sample 144s; X — Watznaueria 

ovata, sample 111/112; Y — Watznaueria biporta, sample 30; Z, AA — Watznaueria cynthae: Z — sample 46, AA — sample 142s;  

AB — Watznaueria manivitiae, sample 132; AC, AD — Cyclagelosphaera margerelii: AC — sample 9, AD — sample 1t, small specimen;  

AE, AF — Cyclagelosphaera deflandrei, sample 9; AG, AH — Cyclagelosphaera argoensis, sample 1t; AI — Parhabdolithus cf. robustus, 

sample 5b, reworked specimen from the older Jurassic strata; AJ — Parhabdolithus marthae, sample 89, reworked specimen from the older 

Jurassic strata.

159

J/K BOUNDARY AND HIGH RESOLUTION BIOSTRATIGRAPHY OF THE KUROVICE SECTION

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Fig. 7. Kurovice section, calcareous nannofossils, Nannoliths including Eoconusphaeraceae, Nannoconaceae and uncertain “polycycloliths”.  

Photographs in cross polarized light, D, E, G, I, J, Q, S, U, W, X, Z, AA, AC, AF and AG in plane polarized light. A — Lithraphidites carnio­

lensis, sample 142 s; B — Diazomatolithus lehmanii, sample 1t; C — Rotelapillus crenulatus, sample 133/134; D — pentalith, sample 8/9;  

E, F — Hexalithus noeliae, sample 100 limestone; G, H — Assipetra infracretacea, sample 138; I–L — Conusphaera sp.: I–K — sample 103 

(specimen in 0

o

 and 30

o

), L — sample 1a; M, N — Conusphaera mexicana mexicana, sample 69 (specimen in 0

o

 and 30

o

); O — Conusphaera 

mexicana minor, sample 1t (specimen in 0

o

);  P — Conusphaera mexicana minor, sample 1t (specimen exceeding the size of 4 µ), cf.;  

Q, R — Polycostella beckmanii, sample 5b; S, T — Nannoconus sp., sample 1t; U, V — Nannoconus puer, sample 5b; W — Nannoconus 

compressus, sample 133/134, reworked specimen; X — Nannoconus globulus minor, sample 75; Y, Z — Nannoconus globulus globulus, 

sample 132; AA, AB — Nannoconus wintereri, sample 100 limestone; AC, AD — Nannoconus wintereri, sample 100 limestone (probably 

early form of N. wintereri), cf.; AE, AF — Nannoconus steinmannii minor, sample 145; AG, AH — Nannoconus kamptneri minor, sample 

133/134; AI, AJ — Nannoconus kamptneri kamptneri, sample 124.

160

SVOBODOVÁ, ŠVÁBENICKÁ, REHÁKOVÁ, SVOBODOVÁ, SKUPIEN, ELBRA and SCHNABL

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Chr

onostratigraphy

Zonation (Casellato 2010) 

Sample No.

Nannofossil abundance

Nannofossil preservation

Assipetra infracr

etacea

Biscutum ellipticum

Conusphaera mexicana mexicana

Conusphaera mexicana minor

Conusphaera 

sp. 1

Cr

etar

habdus 

sp.

Cruciellipcis cuvillieri

Cyclagelosphaera ar

goensis

Cyclagelosphaera deflandr

ei

Cyclagelosphaera mar

ger

eli

Cyclagelosphaera r

einhar

dtii

Diazomatolithus lehmanii

Discor

habdus 

cf.

 ignotus

Ethmor

habdus gallicus

Ethmor

habdus hauterivianus 

Favioconus multicolumnatus

Helenea chiastia

Helenea staur

olithina

Hexalithus noeliae

Hexalithus strictus 

Lithraphidites carniolensis

Lotharingius hauffii 

Lotharingius sigillatus

 

Manivitella pemmatoidea

Micrantholithus

 sp.

Miravestina favula

Nannoconus colomi

Nannoconus compr

essus

Nannoconus erbae

Nannoconus globulus globulus

Nannoconus globulus minor

Nannoconus infans 

Nannoconus kamptneri kamptneri

Nannoconus kamptneri minor

Nannoconus puer

Nannoconus steinmannii minor

Nannoconus st. steinmannii 

B  e  r

  r

  i  a  s  i  a  n

NK-1 

148

VL EP

VR

R F

ER

ER ER

147 b

VL EP

?

ER

VR VR VR

?

VR

ER

ER

145

L

VP

?

VR ER ER

VR R R-F

VR

ER

ER

ER

ER

ER

144 s

VL VP

ER

VR R

ER

ER

ER

? ER

143 b

VL EP

VR

ER

ER R R-F

VR

142 s

L-M P

R VR ER

VR VR R

?

f

? VR

140

EL VP

VR

VR R

VR

?ER

?r ?r ?f

ER

ER

138

L-M VP ER

R VR ER

ER R R

ER

ER

136

EL EP

ER

?f fER ER VR

?f

?F

135

L

VP

R VR

VR VR R-F

VR

133/134 VL VP

ER VR ER

ER ?f ER VR VR ? VR

ER

ER

ER

ER ER

ER ER

132

M

P

ER ER

VR R R

ER

ER

?f

ER

131

VL EP

R ER ER

R R-F

?ER

ER

130 t

L-M VP

VR ER

fVR VR R

ER ER

?f

ER ER

129

VL EP

R VR VR

ER R R

ER

?ER ER

ER

128

EL EP ?ER

VR VR VR

R R-F

ER

ER

?ER

ER

?ER

127

VL VP

VR ER

ER VR R

?r

ER

126

L

P

R ER ER

ER VR R

?

124

VL VP ?ER

VR VR ER

?f

VR R

ER

ER ER

ER

ER

NKT

 ZONE 

122

VL EP

VR ER ER

ER R F

ER

?ER

120

M 

P

R VR ER

R F

ER ER

?ER

118

M

P ?ER

R VR VR

R F

ER

ER ER

?ER ER

116

VL VP

VR ER ER

R F

ER ER

114

L-M VP

R ER

?ER R F

?ER

ER

112

L

VP

R VR

ER R R-F

ER

ER

111/112 M

P

R

?

R R-F

ER

f?

110

VL EP

R VR VR

ER R F

ER

r

ER

109

L

VP

VR ER ER

R R

ER

ER

107

VL VP

ER

ER

ER

106 t

VL VP

R VR ER

ER R F

ER

ER

106 b

L

VP

VR VR

R F

VR

ER

ER

105 s

EL VP

VR ER

ER R R

ER

ER

105 b

L

VP

ER

R R

ER ER

ER

f

103

L

VP

VR

VR

VR R

ER

ER

102

VL VP

R VR ER

ER R R

ER

ER

ER ER

101 t

L

VP

R VR

R R-F

ER

VR

ER ER

101 y

VL VP

R VR

R R

ER

ER

?ER

ER

101 x

L

VP

R VR ER

VR R R-F

ER

ER

?ER

101 b

L

VP

R VR ER

VR R C

VR

ER ER

100 lime EL EP ER

ER

VR

ER

ER

f

100 marl L

P

ER

ER

VR R-F

f? ER

99 t

EL EP ER

R VR

R F

ER

ER

ER

99 b

EL EP ER

R VR

ER R R

ER

VR ER

98

EL EP

ER ER

R F-C

ER

ER

97

VL EP ER

R VR

R F

ER

ER

r

VR

ER ?ER

96

VL EP

R VR

ER R F

ER

ER

ER

95 t

EL EP

VR

ER R C

ER

ER

95

L

VP

ER

ER R

ER

f

ER

95 b

VL VP

R VR

ER R F

ER

VR

ER ER

94

L

VP

R R

R F-C

ER

?ER

93

VL VP

R VR

R F

ER

ER

ER

92 t

VL EP ER

R VR

R F

ER

ER

ER ER

ER

Table 1a: Distribution of calcareous nannofossils in the Kurovice section. Semi-quantitative data as follows. Nannofossil abundance:  

EL  (extremely  low = 1–10  specimens  per  20  FOM);  VL  (very  low = 1–10  specimens  per  10  FOM);  L  (low = 1–10  specimens  per  FOM);  

M (moderately = 10–40 specimens per FOM). Nannofossil total abundance: A (abundant =  >5 specimens per FOM); C (common = 1–5 speci-

mens per FOM); F (few =  >1 specimen per FOM); R (rare = 0–1 specimen per FOM); VR (very rare =  <5 specimens per sample); ER (extremely 

rare = 1–2  specimens  per  sample).  Nannofossil  preservation:  EP  (extremely  poor = strong  etching  and  overgrowth); VP  (very  poor = strong 

 dissolution);  P  (poor = moderate  etching).  Nannofossil  zones  follow  Casellato  (2010);  r = reworked;  ? = uncertain  specimen;  f = fragment. 

Stratigraphically significant taxa marked with grey colour.

161

J/K BOUNDARY AND HIGH RESOLUTION BIOSTRATIGRAPHY OF THE KUROVICE SECTION

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Chr

onostratigraphy

Zonation (Casellato 2010)

Sample No.

Nannofossil abundance

Nannofossil preservation

Assipetra infracr

etacea

Biscutum ellipticum

Conusphaera mexicana mexicana

Conusphaera mexicana minor

Conusphaera 

sp. 1

Cr

etar

habdus 

sp.

Cruciellipcis cuvillieri

Cyclagelosphaera ar

goensis

Cyclagelosphaera deflandr

ei

Cyclagelosphaera mar

ger

eli

Cyclagelosphaera r

einhar

dtii

Diazomatolithus lehmanii

Discor

habdus 

cf.

 ignotus

Ethmor

habdus gallicus

Ethmor

habdus hauterivianus 

Favioconus multicolumnatus

Helenea chiastia

Helenea staur

olithina

Hexalithus noeliae

Hexalithus strictus 

Lithraphidites carniolensis

Lotharingius hauffii 

Lotharingius sigillatus

 

Manivitella pemmatoidea

Micrantholithus

 sp.

Miravestina favula

Nannoconus colomi

Nannoconus compr

essus

Nannoconus erbae

Nannoconus globulus globulus

Nannoconus globulus minor

Nannoconus infans 

Nannoconus kamptneri kamptneri

Nannoconus kamptneri minor

Nannoconus puer

Nannoconus steinmannii minor

Nannoconus st. steinmannii 

Berriasian

NJT

 17 Zone

NJT

 17b Subzone

92 b VL VP

R ER ER

ER ER R R

ER

?ER r

ER ER

91

VL EP

R VR ER

?ER R R-F

ER

90

L

P

R VR

?ER ER R R-F

ER

ER

?r

ER

89

VL VP ?ER

R VR ER

R R

ER

ER

r

88

L

VP ?ER

R ER

?ER

R F

ER

?ER

ER

87

EL EP ?ER

R VR ?ER

R R

?ER

?r

86/87 EL EP ER

R VR ER

VR R R

ER

VR

86

VL EP

R R ER

R R-F

ER

?r

ER

T  i  t  h  o  n  i  a  n

85/86 VL EP

R VR

ER R R-F

VR

?ER

ER

85

VL EP ER

R VR VR

ER

F

ER

ER ER

84

VL EP

R VR ER

R R-F

ER

ER

82

VL EP ER

VR VR

ER R C

ER

ER

?r

81

VL

P

ER R VR

ER R F

ER

ER ER

?ER

79/80 VL VP ?ER?ER R ER

ER

R F

ER

NJT

 17a Subzone

79

VL VP

R ER

R F

ER

ER

78

VL EP

ER

fER ER R

ER

75

EL EP

R VR ER

R R-F

ER

ER

71/72 EL EP

R VR

ER R F

VR

70 t

VL VP

ER

VR R

ER

f

?r

?

ER

ER

69

EL EP

R VR

R F

ER

?ER ER

?r

66/67 EL VP

R VR

?ER

R F

VR

ER

ER

?ER

66 t

L

VP

R ER

R

f?

66

VL EP

ER

R

60

L

VP ?ER

VR VR

R R

ER

?ER

ER

ER

55

VL EP

VR ER

R F

ER

NJT

 16 Zone

52/52 M VP ?ER

VR VR ER

R R

ER

ER

?ER

50/51 VL EP

?

VR R

46

L

EP

?

ER fER

ER R R

?ER ER

?

44 t

VL EP

ER ? ER

ER R

ER ER ER

43

L

EP

?ER

VR R R

ER

?

42/43

L

EP

ER R

ER

f

40 b VL EP

ER

VR R

?

36

L

EP

VR ER

VR VR R

30

H

VP ?ER

R ER

fER

R F

ER

29

EL EP

ER

ER VR

24/25 L-M P

ER

VR R-F

ER

?ER

20/21

L

EP

VR

ER VR R-F

20

L

EP

fER fER R

14 t

M

P

R ER

ER R F

VR ER

?ER

13

L

EP

ER

ER R

9

L-M VP

VR ER

ER VR F

?

 8/9

L

P ?ER

ER R F

VR ER

ER

5 b

M

P

VR

VR VR F

ER

VR VR

ER

3

L

EP

ER ER

ER R

ER

f?

1 t

VH

P

VR R

fER

VR R F

ER ER fER

f? ?ER ER

fER

?

VR

NJT

 15 Zone

NJT

 15b Sbz

-1

L-M P

ER ER

ER R R

-2

L-M P

ER

R F

ER

-3

L-M P

ER VR ER

VR F

ER

ER

-6

L

P

ER

VR R

ER

-7

L

VP

VR ER

ER ER R

-8

L-M VP

ER ER

ER VR F

-11 L-M P

VR

ER

ER VR F

-13

L

P

R VR ER

VR F

ER

-16

L

P

R ER ER

ER VR R-F

ER

ER

?

?

-17 L-M P

VR ER

ER VR R-F

-19

L

VP

ER R ER ER

ERE VR R

ER ER

-20

VL VP

VR ER

ER ER R

ER

-21

L

P

R ER ER

ER R

ER

-26

EL EP

VR ER ER

R

ER

-28

VL EP

VR

R ER ER

-29 t VL EP

VR

VR

ER

-29

L

VP

VR

VR

R ER ER

ER

Table 1b (continued): 

162

SVOBODOVÁ, ŠVÁBENICKÁ, REHÁKOVÁ, SVOBODOVÁ, SKUPIEN, ELBRA and SCHNABL

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Chr

onostratigraphy

Zonation (Casellato 2010)

Sample No.

Nannofossil abundance

Nannofossil preservation

Nannoconus winter

eri

Nannoconus 

sp.

Nannoconus

 sp. (cross-section)

Par

habdolithus marthae

Par

habdolithus

 sp.

penthaliths

Pickelhaube furtiva

placoliths (outer rims)

Placozygus

 sp.

Polycostella beckmannii

Polycostella senaria

Retacapsa octofenestrata

Retacapca schizobrachiata

Retacapsa surir

ella

Retacapsa 

sp. (outer rim)

Rhagodiscus nebulosus

Rhagodiscus 

sp.

Rotelapillus cr

enulatus

Speetonia colligata

Staur

olithites 

sp.

Thoracosphaera 

sp.

Umbria granulosa minor

W

atznaueria barnesiae

W

atznaueria biporta

W

atznaueria britannica

W

atznaueria communis

W

atznaueria cynthae

W

atznaueria fossacincta

W

atznaueria manivitiae

W

atznaueria ovata

Zeugr

habdotus cooperi 

Zeugr

habdotus ember

gerii

Zeugr

habdotus er

ectus

Zeugr

habdotus fluxus

Zeugr

habdotus 

sp. 1 sensu Bown 1992

Zeugr

habdotus 

sp. 

B  e  r

  r

  i  a  s  i  a  n

NK-1 

148

VL EP

ER ER

ER

C

VR

ER VR

ER ER

147 b

VL EP

r

?

ER

VR

F ER VR R ER ER VR

? ER

145

L

VP

ER

f 

ER

F-C ER VR R

ER VR

144 s

VL VP

VR

ER

R-F

ER ER ER VR ER

ER

143 b

VL EP

VR ER

r

ER

? ER

C

VR

ER VR VR

142 s L-M P

f

ER

ER

C ER VR VR

VR VR

VR ER

140

EL VP

ER ER

VR

?f

VR

?ER C

VR

VR VR ER

138

L-M VP

ER

ER

F-C ER VR VR

R VR

ER

136

EL EP

ER

R

ER

ER ER

135

L

VP

F

ER VR

VR ER

133/134 VL VP

ER

?

ER

ER

? ER ER

R

?

R

VR VR ER ER ER ER

132

M

P

cf. ER

F-C

VR

ER ER R

ER ER

131

VL EP

ER ER

?ER

F-C

VR

VR R

ER

130 t

L-M VP

ER

F

ER

ER ER VR

ER ER

129

VL EP ?ER VR VR

C-A ER VR ER

ER R

ER

128

EL EP ?ER VR

ER

C ER VR ER

ER R

VR

127

VL VP

ER ER

ER

?ER

C

VR

VR

ER ER

126

L

P

F

ER

ER ER

ER

124

VL VP

VR ER

C-A

VR

VR

ER

NKT

 ZONE 

122

VL EP ER ER ER

C

VR

ER R

120

M 

P ER VR ER

C

VR

VR

ER ER

118

M

P

ER

ER

ER

F-C

R

ER ER R

ER ER

116

VL VP ?ER VR ER

ER

?ER

C

VR

ER ER VR

114

L-M VP

ER

ER

C

VR

ER R

ER

112

L

VP

VR

ER

C

R ER ER

R

ER

111/112 M

P

ER

C

VR

ER ER VR VR ER

110

VL EP

ER ER

ER

ER

C

VR

ER ER R

109

L

VP ?ER VR

ER

C

ER

R

ER

107

VL VP

f?

fER

R

VR

ER ER

106 t

VL VP ER VR ER

ER

A

VR

ER R

ER

106 b

L

VP ?ER ER

ER

A

R ER

ER R

105 s

EL VP

ER

C-A ER VR

R

ER

105 b

L

VP

ER

?

f

F

ER ER VR VR VR VR fER

103

L

VP

R-F

ER

ER ER ER

102

VL VP

VR

C

R

VR R

ER

101 t

L

VP

VR VR

C

R ER

VR VR

ER

cf.

101 y

VL VP

VR ER

R

VR

ER

R

ER

101 x

L

VP

VR ER

C-A ER VR

VR VR

ER

ER

101 b

L

VP

ER ER

R-F

R

ER R ER

100 lime EL EP

ER

ER VR

ER

ER

100 marl L

P

?

F

VR

VR

99 t

EL EP

VR ER

ER

A

R

ER R

ER ER

99 b

EL EP ?VR ER

?ER

A ER R

ER VR R

ER

98

EL EP

ER

ER

A

R

ER  ER R

ER

97

VL EP ?ER ER ER

A

VR

VR R

ER

96

VL EP ER VR ER

ER

C

VR

ER

R

ER

95 t

EL EP ER VR

A

VR

ER R ER

ER

95

L

VP

ER

?

F

VR

ER VR

95 b

VL VP ?ER ER ER

C

VR

ER R ER

94

L

VP

ER

?ER

C

R

R

93

VL VP ?ER VR

C

VR

ER

R

ER

92 t

VL EP

VR ER

?r

C

VR

VR

Table 1c (continued): 

163

J/K BOUNDARY AND HIGH RESOLUTION BIOSTRATIGRAPHY OF THE KUROVICE SECTION

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Chr

onostratigraphy

Zonation (Casellato 2010)

Sample No.

Nannofossil abundance

Nannofossil preservation

Nannoconus winter

eri

Nannoconus 

sp.

Nannoconus

 sp. (cross-section)

Par

habdolithus marthae

Par

habdolithus

 sp.

penthaliths

Pickelhaube furtiva

placoliths (outer rims)

Placozygus

 sp.

Polycostella beckmannii

Polycostella senaria

Retacapsa octofenestrata

Retacapca schizobrachiata

Retacapsa surir

ella

Retacapsa 

sp. (outer rim)

Rhagodiscus nebulosus

Rhagodiscus 

sp.

Rotelapillus cr

enulatus

Speetonia colligata

Staur

olithites 

sp.

Thoracosphaera 

sp.

Umbria granulosa minor

W

atznaueria barnesiae

W

atznaueria biporta

W

atznaueria britannica

W

atznaueria communis

W

atznaueria cynthae

W

atznaueria fossacincta

W

atznaueria manivitiae

W

atznaueria ovata

Zeugr

habdotus cooperi 

Zeugr

habdotus ember

gerii

Zeugr

habdotus er

ectus

Zeugr

habdotus fluxus

Zeugr

habdotus 

sp. 1 sensu Bown 1992

Zeugr

habdotus 

sp. 

Berriasian

NJT

 17 Zone

NJT

 17b Subzone

92 b VL VP

ER ER

F ER R

R

ER

91

VL EP

ER ER

ER

C-A

VR

ER VR

ER

90

L

P ER

ER

F-C

R

ER ER R

89

VL VP

ER

ER

ER

?

F ER VR

R ER

88

L

VP ?ER ER ER

ER

F

R

?ER

R

ER

87

EL EP ?ER ER

?r

C

R

?ER ER R

ER

86/87 EL EP ER VR

A

R

ER ER R

ER ER

86

VL EP ?ER VR ER

?ER

F

R

ER R

ER

T  i  t  h  o  n  i  a  n

85/86 VL EP ER VR ER

ER

ER

C

R

ER ER R ER ER

85

VL EP ER VR

ER

F

R ER

ER R

84

VL EP

ER

r

ER

R

R

R

ER

82

VL EP

VR

F

R

ER R

ER

81

VL

P ?ER VR ER

ER

ER

C

VR

ER R

ER

79/80 VL VP ER ER ER

F-C ?ER R

R

NJT

 17a Subzone

79

VL VP

ER ER

F ER R

R

78

VL EP

R

ER

fER

ER

75

EL EP

ER

r

ER

ER

C

R

ER

R

ER

71/72 EL EP

ER

F-C

R

ER R

70 t

VL VP

ER

? ?f R-F

VR R ER ER ER

69

EL EP

?

F-C ER R

ER R

ER

66/67 EL VP

VR

?ER

? ?ER F-C

R

R

66 t

L

VP

ER

?

F

VR

R ER

66

VL EP

R

VR

60

L

VP

VR

r

VR

?

F-C ER VR

R

ER

55

VL EP

ER ER

ER

?ER

F-C

VR

ER VR

NJT

 16 Zone

52/52 M VP

ER

ER

ER

C ER VR

VR

50/51 VL EP

ER

R-F

VR R

ER R

46

L

EP

ER

f?

R-F

R R

?

R VR ER ER ER

44 t

VL EP

VR

ER

R-F

ER R

VR ER

43

L

EP

ER

C-A

VR

ER R

ER

42/43

L

EP

F

VR R

VR ER

ER

40 b VL EP

?

ER

ER

R-F

VR

?

R VR ER

ER cf.

ER

36

L

EP

ER

C-A

VR

VR R

ER

30

H

VP

r

R

ER

C-A ?ER R

? VR VR ? VR ER

ER

29

EL EP

R

ER

ER

24/25 L-M P

r

r

ER

ER

?f F

VR

R ER

ER

20/21

L

EP

F

VR

VR

ER

20

L

EP

?ER

ER

R

VR

VR ER

14 t

M

P

ER

R

?ER

C

R

R R ER ER

13

L

EP

F

ER ER

9

L-M VP

VR

ER

F-C

ER

ER ER

ER

ER

 8/9

L

P

r ER

VR

F-C

VR R-F

R R ER ER

5 b

M

P

r

r

R ER

ER

F-C

R

R VR

ER

3

L

EP

ER

F

ER ER

fER

1 t

VH

P

ER

r ER ?

VR

ER

C-A

VR

R

VR

NJT

 15 Zone

NJT

 15b Sbz

-1

L-M P

ER

C-A ER VR

ER R

ER ER

-2

L-M P

VR

ER

F

VR

R

ER ER

-3

L-M P

VR

?

F

R

R

VR ER

-6

L

P

?

VR

F

R ER

VR ER

ER ER

ER

-7

L

VP

ER

?

F

R

ER VR

-8

L-M VP

VR

?

F

R

ER VR

ER

-11 L-M P

?

?

r

VR

ER

VR

F

R

R ER

ER

ER

ER

-13

L

P

R

ER

F ER R

ER VR

ER

-16

L

P

?

r

R

?

F

R VR

R VR

VR ER

-17 L-M P

ER

VR

F-C

R

ER VR

ER

-19

L

VP

R

F

ER ?

ER ER

fER

-20

VL VP

VR

ER

F

R

VR

ER

-21

L

P

VR

ER

F-C

VR

ER VR

ER

-26

EL EP

VR

VR

ER

-28

VL EP

?

R-F

VR VR

ER VR

-29 t VL EP

ER

VR

ER

-29

L

VP

r

VR

ER

F ER R VR

VR VR ER

Table 1d (continued): 

164

SVOBODOVÁ, ŠVÁBENICKÁ, REHÁKOVÁ, SVOBODOVÁ, SKUPIEN, ELBRA and SCHNABL

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

radiolaria–spiculae microfacies (wackstones), pelbiomicro-

sparitic limestone of radiolaria–spiculae microfacies and cri-

noidal–radiolaria–spiculae or crinoidal microfacies (packstone) 

and pelbiointraclastic limestones (grainstones) belonging to 

SMF 2 and SMF 3 were observed (Fig. 8A–C). Radiolarians 

and sponges are locally concentrated in clusters, occasionally 

as a result of bioturbation. They are calcified, and in some 

beds replaced by chalcedony or microcrystalline quartz. Some 

bioclasts are silicified or phosphatized. Rocks contain scat-

tered pyrite, less often framboidal pyrite, and a silty clastic 

admixture composed of quartz, muscovite, and rare glauco-

nite. Bioclasts impregnated with pyrite sometimes make up 

cluster concentrations. Clasts of volcanic rocks were recorded. 

The matrix is occasionally penetrated by fractures filled by 

calcite. The deposits contain rare aptychi, ostracods, forami ni-

fers, radiolarians, sponge spicules, crinoids, bivalve fragments, 

spores of Globochaeta alpina, calcareous  cysts of Para­

stomiosphaera malmica (Fig. 9A), Colomisphaera carpathica 

(Fig. 9C), C. lapidosa (Fig. 9D), less frequent C. cieszynica, 

C. radiata (Fig. 9G), C. pieniniensis, Carpistomiosphaera 

titho nica  (Fig. 9E), Committosphaera pulla, Cadosina semi­

radiata fusca (Fig. 9K), C. semiradiata semiradiata (Fig. 9J), 

C. semiradiata cieszynica, Stomiosphaera moluccana (Fig. 9B), 

Committosphaera czestochowiensis, C. sublapidosa, and  

C. ornata (Fig. 9H).

Beds −6 to 35 (~7.7–35.5 m): Micrite limestones — biomi-

critic, pelbiomicritic, pelbiointraclastic and marly limestones 

to silty limestones (mudstones, wackestones and packstones), 

SMF 2, 3, 4.  Rocks  are  slightly  laminated  and  locally  biotur-

bated or they exhibit a slightly recrystallized or silicified 

matrix and microfossils. In some places, the gradation of allo-

chems is distinct. Fragments of ostracods, bivalves, crinoids 

(including planktonic Saccocoma sp.) may create “allodapic” 

beds. Foraminifers, aptychi, the alga Girvanella, microprob-

lematica of Gemeridella minuta and other unrecognizable 

microfossils dominate. In the lower part of interval, dinofla-

gellate cysts are more abundant and indicate Cadosina–spicu-

lite–radiolarian microfacies type. Radiolarians and sponge 

spicules, occasionally also saccocomids, are replaced by chal-

cedony or microcrystalline quartz. A few bioclasts are phos-

phatized. Locally abundant fractures filled by calcite penetrate 

the matrix and frutexites (Fig. 8D). The matrix is rich in pyrite 

and organic matter. Rocks contain a silty clastic admixture 

composed of quartz, muscovite and rare glauconite. Among 

the calcareous cysts, Cadosina semiradiata fusca and C. semi­

radiata semiradiata dominate over specimens of the genera 

Colomisphaera, Stomiosphaera, Committosphaera, Para sto­

mio sphaera  and Carpistomiosphaera.

Beds 36–42 (~35.5–37.65 m): Micrite limestones — biomi-

critic, pelbiomicritic of spiculite and radiolarian–spiculite 

microfacies (wackestones to packstones), locally bioturbated 

or slightly laminated. In some beds smooth laminae rich in 

small, occasionally graded bioclasts (crinoid columnals, 

Sacco coma sp., and sponge spicules) are present. Rich fram-

boidal pyrite scattered in matrix is documented in a few beds. 

Pyrite clusters partially replace bioclasts. Limestones contain 

silty quartz, muscovite and glauconite. Calcified radiolarians 

and sponge spicules, locally replaced by chalcedony or micro-

crystalline quartz, dominate over rare ostracod and crinoid 

fragments. Calcareous  dinoflagellate cysts of the genera 

Colomisphaera (including C. fortis),  Committosphaera  and 

Cadosina  were documented. The presence of the genera 

Stomiosphaera, Carpistomiosphaera and Parastomiosphaera 

is shown by reworked material from the older, Early Tithonian, 

strata.

Beds  42/43–84  (~37.65–51.9  m)  are  divided  into  three 

intervals:

A) Beds 42/43–51/52 (~37.65–42.9 m): Micrite limestones 

— biomicritic, pelbiomicritic locally slightly recrystallized of 

spiculite and radiolarian–spiculite microfacies (wackestones, 

packstones to mudstones), silty, slightly laminated limestones 

of spiculite microfacies (packstones) locally with silt rich 

 laminae, and siliceous siltstones rich in tiny plant fragments. 

The deposits can be interpreted as SMF 2 and SMF 3. Radio-

larians and sponge spicules are concentrated in clusters. A silt 

admixture is abundant in places. Some beds are rich in organic 

matter and pyrite, which is scattered in the matrix, impreg-

nates bioclasts or creates clusters. Bioclasts are locally phos-

phatized. The matrix is penetrated by numerous fractures and 

veins filled by calcite. Calcified radiolarians and sponge spi-

cules dominate over crinoids, ophiurids, ostracods, bivalves, 

aptychi,  Saccocoma  sp. and spores of Globochaete alpina. 

The first rare calpionellids are recorded here — Tintinnopsella 

remanei,  Praetintinnopsella andrusovi, Calpionella alpina 

and specimens of the genus Crassicollaria. The occurrence of 

calcareous dinoflagellate cysts points to reworking of material 

from older Jurassic strata.

B) Beds 52–70 (~42.9–48.25 m): The character of deposits 

and microfacies SMF 2 and SMF 3 are similar to the previous 

interval. Sample 66 shows the erosion surface which separates 

an interval of slightly laminated wackestone to mudstone from 

graded pelbiomicrosparitic interval (grainstone) with clasts of 

volcanic rocks (SMF 4). Above the erosion surface, frutextites 

(Maslov) and radiolarians predominate. The rocks contain 

calcified radiolarians, sponge spicules, ostracods, globo-

chaetes, Spirillina sp. and a few further fragments of benthic 

forami nifers.  Calpionellids are more common and associa-

tions are represented by the genus Crassicollaria (Fig. 10A), 

Calpio nella  (Fig. 10B–D, J, K) and Tintinnopsella (Fig. 10L). 

Some of the crassicollarian loricae are deformed. Dinoflagellate 

cysts are represented by the genera Colomisphaera, Committo­

sphaera, Stomiosphaera, Cadosina, Carpistomiosphaera, and 

Parastomiosphaera. The majority of these are reworked from 

older Jurassic strata (Figs. 11, 12).

C)  Beds  70/71–84  (~48.25–51.9  m,  Košťák  et  al.  2018): 

Micrite limestones — biomicritic, pelbiomicritic, slightly 

laminated and locally bioturbated limestones of spiculite–

radiolarian microfacies — wackestones, occasionally mud-

stones or packstones; SMF 3 prevails. Allochems locally show 

grading. Some of the bioclasts and matrix are silicified. 

Fractures filled by calcite penetrate the matrix in different 

directions (three directions are common), and cut small 

165

J/K BOUNDARY AND HIGH RESOLUTION BIOSTRATIGRAPHY OF THE KUROVICE SECTION

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Fig. 8. Important microfacies determinated in the Kurovice section. SMF = standard microfacies type. A — Pelbiomicritic laminated limestone 

of crinoid-radiolaria-spiculae microfacies (packstone). SMF 2, sample −9. B — Bioclastic limestone of Cadosina-crinoid microfacies (pack-

stone). SMF 2, sample −2; C — Pelbiomicritic limestone of  radiolaria–spiculae microfacies (packstone) with rare Saccocoma sp. SMF 2, 

sample −16; D — Frutextite in biomicritic limestone of radiolaria–spiculae microfacies (wackestone). SMF 3, sample 3/1; E — Calpionella 

alpina event across the J–K boundary in biomicritic limestone of spiculae–radiolaria microfacies (wackstone). SMF 3, sample 86;   

F — Accumulation of bioclasts in bioturbated limestone of spiculae–radiolaria microfacies (wackestone). SMF 3, sample 109; G — Microbreccia 

limestone with variable types of extraclasts and bioclasts derived from the shallow carbonate platform environment. SMF 4, sample 105t;  

H — Extraclast of the Late Tithonian biomicritic limestone of the Crassicollaria Zone, Intermedia Subzone with large forms of Calpionella sp. 

and Crassicollaria intermedia in the Berriasian deposits of the Alpina Subzone of Calpionella Zone. SMF 4, sample 101x. 

166

SVOBODOVÁ, ŠVÁBENICKÁ, REHÁKOVÁ, SVOBODOVÁ, SKUPIEN, ELBRA and SCHNABL

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

caverns filled by silica. The matrix is locally rich in scattered 

pyrite and organic matter, in the form of tiny plant fragments. 

The rocks contain calcified radiolarians, sponge spicules, and 

fewer fragments of ostracods, bivalves and foraminifers. 

Among calpionellids, specimens of the genus Crassicollaria 

outnumber Calpionella alpina and Calpionella sp., Calpionella 

grandalpina, C. elliptalpina and Tintinnopsella carpathica. 

Deformed crassicollarian loricae are still present. The abun-

dance of calcareous dinoflagellate cysts decreases. These 

include an autochthonous species, Stomiosphaerina proxima, 

and reworked specimens of Colomisphaera, Committosphaera, 

Cadosina and Parastomiosphaera (Figs. 11, 12).

Beds  85/86  to  148  (~51.9–76.7  m)  are  also  divided  into 

three intervals (Košťák et al. 2018): 

A)  Beds  85/86  to  118  (~51.9–68.5  m)  are  represented  by 

micrite slightly laminated and locally bioturbated limestones 

of spiculite–radiolarian microfacies (wackestones to mud-

stones,  SMF 3).  Bioturbated  intervals  contain  rich  bioclasts 

(mainly radiolarians and sponge spicules) concentrated into 

“nests”. Marly

 

intercalations contain clastic admixture, frag-

ments of plants and small clasts of micritic Calpionella bea-

ring limestones are recognized. Further, the microbreccia 

limestones (slightly laminated pelbiomicritic) bear the bio-

clasts derived from a carbonate-ramp environment, extraclasts 

of dolomitic limestones, limestones with Tithonian crassicol-

larian,  shales  and  volcanic  rocks  (SMF 4).  Bioclasts  and  

the matrix are slightly silicified and some of bioclasts are 

phosphatized. Limestone matrices contains fine silt, composed 

of quartz, muscovite, rare glauconite and volcanic ash. Fru-

textites appear in some beds. Abundant fractures filled by cal-

cite penetrate the matrix in different directions. Discontinuous 

veinlets (Mišík 1971) of calcitic veins are documented. Micro-

fossils are represented by calcified radiolarians, sponge spi-

cules, less common fragments of ostracods, bivalves, aptychi, 

crinoids, ophiurids, bryozoans, and benthic foraminifers 

(Nodo  saria sp., Dentalina sp., miliolids), and spores of Globo­

chaete alpina and Didemnum carpaticum. Small spherical 

forms of Calpionella alpina dominate over Crassicollaria 

parvula, Calpionella sp., and infrequent C. elliptalpina,  

C. grandalpina, and Tintinnopsella carpathica (Fig. 12).  

The majority of crassicollarians have deformed loricae. As in 

the underlying strata, dinoflagellates include specimens of  

the genera Colomisphaera, Cadosina, Stomiosphaerina, Para­

stomiosphaera, Colomisphaera, and Carpistomiosphaera. A few 

loricae of the larger Calpionella morphotypes, deformed cras-

sicollarians and some dinoflagellate cysts were redeposited 

from Jurassic sediments.

B) Beds 119–131 (~68.5–71.8 m): Micrite, locally slightly 

laminated and bioturbated limestones (wackestones, sporadi-

cally  mudstones  and  packstones,  SMF 3  predominates)  and 

rare siltstones. The matrix contains rich, scattered pyrite and  

a silty admixture, and is sometimes penetrated by fractures 

and veins filled by calcite. Some small bioclasts are phospha-

tized. Calcified radiolarians and sponge spicules dominate in 

bioclastic wackestones. Moreover, rare fragments of ostracods, 

crinoids, bivalves and aptychi, and very rare calpionellids 

occur there. Loricae  of the genus Remaniella  (including  

R. catalanoi, R. duranddelgai, R. ferasini and R. colomi) are 

observed here for the first time (Fig. 10F–I). They are accom-

panied by Calpionella alpina, Tintinnopsella doliphormis,  

T. carpathica, and Lorenziella hungarica (Figs. 11, 12). A large 

number of deformed loricae is a typical phenomenon in these 

beds. Calpionellid loricae in the autochthonous matrix are thin 

and bear marks of dissolution, whereas loricae of reworked 

specimens have significantly thicker calcite walls. A small 

number of dinoflagellate cysts of the genera Colomisphaera, 

Stomiosphaera, Cadosina and  Parastomiosphaera malmica 

are present. They are considered allochthonous components of 

these deposits. Colomisphaera fibrata has been recorded only 

here (Fig. 12) and may document erosion of Early Tithonian 

strata.

C) Beds 132–148 (~71.8–76.7 m): In this, the highest inter-

val in the quarry sequence, micrite slightly laminated, biotur-

bated or slightly recrystallized limestones of spiculite– 

 radiolarian microfacies (wackestones, mudstones and also 

packstones) and slightly laminated silty limestones (mud-

stones) corresponding to SMF 2 and SMF 3 were documented. 

Bioclasts usually create nest-shaped accumulations in biotur-

bated beds. The matrix is rich in scattered pyrite, admixed silt, 

and it is penetrated by fractures and veins filled with calcite. 

Some small bioclasts are phosphatized. The sediments contain 

calcified radiolarians, sponge spicules, rare fragments of 

ostra cods and foraminifers. Calpionellids occur rarely and 

many of them, mainly remaniellids, have damaged collars, 

which makes their identification difficult. Numerous deformed 

crassicollarian loricae are still present. Calpionellids are repre-

sented by Calpionella elliptica, C. alpina, Crassicollaria 

 parvula, Tintinnopsella carpathica and Lorenziella hungarica 

(Fig. 10). Cyst associations are mixed and contain reworked 

specimens. They include locally abundant Cadosina semira­

diata fusca and, as in the underlying strata, Colomisphaera, 

Committosphaera, Parastomiosphaera, and Stomiosphaera.

Palynomorphs

Palynomorphs are rare and usually poorly preserved due to 

the high CaCO

3 

content and the presence of pyrite. Pyrite crys-

tals are often found inside specimens and usually corrode them. 

Most rock types provided abundant phytoclasts of brown or 

black colour with rare and often broken non-calcareous dino-

flagellate cysts, acritarchs, pteridophyte spores, gymnosperm 

pollen, planispiral agglutinated foraminiferal linings and, 

occasionally, some prasinophyte algae. The vertical distribu-

tion of palynomorphs is given in Fig. 13. No palynomorph was 

detected in samples 33, 39, 41, 43, 46, 56, 70, 97/98, 100/101, 

108/109, 130/131, 134/135 and 135/136.

The following spectra were found:

Sample 25: abundant black phytoclasts with non-calcareous 

dinocysts of Amphorula dodekovae, A. metaelliptica, Circulo­

dinium distinctum, Cometodinium habibii, Cribroperidinium sp., 

Glossodinium dimorphum, Prolixosphaeridium anasillum, 

 

P. mixtispinosum, Subtilisphaera sp., Systematophora daveyi, 

167

J/K BOUNDARY AND HIGH RESOLUTION BIOSTRATIGRAPHY OF THE KUROVICE SECTION

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Fig. 9. Kurovice section, calcareous dinoflagellate cysts. A — Parastomiosphaera malmica, sample −12; B — Stomiosphaera mollucana, 

sample −19; C — Colomisphaera carpathica, sample −2; D — Colomisphaera lapidosa, sample −12; E — Carpistomiosphaera tithonica, 

sample −2; F — Committosphaera pulla, sample −12; G — Colomisphaera radiata, sample −10; H — Commitosphaera ornata, sample −27; 

I — Colomisphaera  pieniniensis,  sample  −20;  J — Cadosina  semiradiata  semiradiata,  sample  −3;  K — Cadosina  semiradiata  fusca,  

sample −2; L — Colomisphaera fortis, sample 148. 

168

SVOBODOVÁ, ŠVÁBENICKÁ, REHÁKOVÁ, SVOBODOVÁ, SKUPIEN, ELBRA and SCHNABL

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

S. orbifera and S. silybum, the acritarch Micrhystridium sp.,  

a prasinophyte alga Pterospermella helios, spores of 

 

the fern Cyathidites minor, and gymnosperm Classopollis toro­

sus pollen. The palynospectrum corresponds to the Tithonian 

age. 

Sample 30a: frequent phytoclasts of brown and black colour 

with broken non-calcareous dinoflagellate cysts, namely: 

Gonyaulacysta sp., Gochteodinia cf. virgula, Ctenidodinium 

ornatum, Pareodinia sp., the acritarch Micrhystridium stellatum, 

Veryhachium irregulare, and pollen of Classopollis torosus — 

often present in tetrads.

Sample 49: frequent phytoclasts of brown and black colour 

with a rich assemblage of non-calcareous dinoflagellate cysts 

similar to associations in the underlying strata and, additio-

nally,  Cribroperidinium  globatum, C. sarjeantii, Pareodinia 

robusta, Gonyaulacysta helicoidea, Hystrichodinium pulchrum, 

Neuffenia willei,  Oligosphaeridium pulcherrimum, Sentu ­

sidinium  sp.,  Stiphrosphaeridium dictyophorum, Systemato­

phora areolata, and Tanyosphaeridium isocalamum. Sporadic 

Micrhys tridium  sp. and gymnosperm pollen, Classopollis 

torosus, also occur.

Sample 50: common phytoclasts of brown and black colour, 

tracheids of Pinaceae, non-calcareous dinoflagellate cysts, 

namely: Dingodinium tuberosum, Oligosphaeridium aff. patu­

lum,  Chytroeisphaeridia chytroeides,  Jansonia  sp., isolated 

opercula of Cribroperidinium sp. and Wallodinium sp., linings 

of planispiral agglutinated foraminifers, the acritarch 

Micrhystridium  sp.,  Leiosphaeridia  sp.,  Pterospermella 

 australiensis, pteridophyte spores Gleicheniidites senonicus, 

Neoraistrickia truncata,  Lycopodiumsporites  sp.,  Poly cin­

gulatisporites and Classopollis torosus, Spheripollenites 

subgra nulatus. The palynospectrum corresponds to the Titho-

nian age. 

Sample 85: abundant black phytoclasts with Micrhystridium 

sp., and the prasinophyte alga Pterospermella. Dinocyst asso-

ciation is similar to underlying strata.

Sample 105: brown and black phytoclasts and radiolarian 

remains. Non-calcareous dinocysts are represented both by 

species derived from underlying strata and by in situ taxa 

Dissiliodinium giganteum, Prolixosphaeridium deirense, 

Prolixosphaeridium sp. A sensu Monteil (1993), and Tehama­

dinium evittii.

Sample 111/112: abundant black phytoclasts, amorphous 

organic matter, broken radiolarian tests, linings of aggluti-

nated foraminifers, rich dinoflagellate cyst association with 

species known from the underlying strata as well as Achomo­

sphaera neptuni, Circulodinium vermiculatum, Dapsilidinium 

multispinosum, Endoscrinium campanula, E. cf.  pharo, 

Gonyaulacysta sp., Kiokansium polypes, P. anasillum, and 

Classopollis torosus. The palynospectrum corresponds to  

the Berriasian age with the redeposition of Jurassic species. 

Sample 132: brown and black phytoclasts, radiolarian rem-

nants, non-calcareous dinocysts similar to the assemblages of 

the underlying strata with new taxa Cyclonephelium hystrix, 

Spiniferites sp. and Sirmidiniopsis sp. An admixture of conti-

nental pteridophyte spores (Echinatisporites  sp.) and 

gymnosperm pollen (Classopollis torosus and  Cerebro­

pollenites macroverrucosus)  is subsidiary. It corresponds to 

the Berria sian age with the redeposition of Jurassic species. 

Sample 132/133: abundant black phytoclasts, non-calcareous 

dinoflagellate cysts Circulodinium sp., Dichadogonyaulax 

bensonii, Endoscrinium campanula,  Gonyaulacysta  sp., 

Leptodinium sp., Oligosphaeridium asterigerum and Prolixo­

sphaeridium granulosum. Pteridophyte spores Densoisporites 

velatus, Gleicheniidites sp. and conifers of Classopollis 

 torosus  is subsidiary. It corresponds to the Berriasian age with 

the redeposition of Jurassic species. 

Selected palynomorphs are shown in Figures 14 and 15.

Biostratigraphy

Despite the poor preservation, microorganisms provide 

important data that help us to detect the Jurassic/Cretaceous 

boundary at Kurovice. According to the calcareous dinoflagel-

late cyst and calpionellid zonations  (sensu Reháková 2000; 

Reháková & Michalík 1997) the section spans the interval 

from the Early Tithonian cyst Malmica Zone up to the Early 

Berriasian Calpionella Zone, Elliptica Subzone (Figs. 11, 12, 

16). Nannofossils confirm this stratigraphic interpretation, 

with  a  zonal  range  from  NJT 15b  up  to  NK-1  (zones  of 

Casellato 2010; Bralower et al. 1989).

 The following calcareous dinocyst and calpionellid zones 

compared to nannofossil events were identified:

The calcareous dinocyst Malmica Zone (Nowak 1968), 

early Early Tithonian was established in the lowermost part of 

the sequence (samples −29 to −7; ~0–7.7 m) by the presence 

of  Parastomiosphaera malmica. Nannofossil assemblages 

contain Polycostella beckmanii and are assigned to the NJT 15b 

Nannofossil Subzone. The first, questionable, small nanno-

conids were found in sample −16 (Table 1b). 

The following calcareous dinoflagellate and calpionellid 

zones were previously mentioned by Elbra et al. (2018a):

The Semiradiata Zone (Reháková 2000), Early Tithonian 

(samples  −6  to  35;  ~7.7–35.5  m;  Elbra  et  al.  2018a)  was 

 recognized based on the abundance of the cysts Cadosina 

semiradiata semiradiata and C. semiradiata fusca. The first 

occurrence (FO) of Helenea chiastia (NJT 16 Nannofossil Zone) 

was recorded immediately above the base of the Semiradiata 

Zone in sample 3.

The Tenuis-Fortis Zone,  early Late Tithonian (samples 

36–42, ~35.5–37.65 m). It was not possible to strictly separate 

the Tenuis from the Fortis zones (Řehánek 1992) because of 

the absence of Colomisphaera tenuis. Only one specimen of 

Colomisphaera sp. was found in sample 20. Reháková (2000) 

assumed that the Fortis Zone coincided with the disappearance 

of chitinoidellids and their substitution by the first transitional 

hyaline–microgranular calpionellids of the Praetintinnopsella 

Zone. A single lorica of Praetintinnopsella andrusovi was 

found in the sample 42/43, but in the overlying Crassicollaria 

Zone. This phenomenon confirms the opinion of Reháková 

(2000).

169

J/K BOUNDARY AND HIGH RESOLUTION BIOSTRATIGRAPHY OF THE KUROVICE SECTION

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Fig. 10. Kurovice section, calpionellids. A — Crassicollaria massutinianna, sample 100; B — Calpionella  grandalpina, sample 101b;  

C — Calpionella elliptalpina, sample 88; D — Calpionella sp., sample 125; E — Lorenziella hungarica, sample 124; F — Remaniella durand­

delgai, sample 132; G — Remaniella  borzai, sample 120; H — Remaniella  colomi, sample 125; I — Remaniella  ferasini, sample 127;  

J — Calpionella elliptica, sample 133; K — Calpionella elliptica, sample 134; L — Tintinopsella carpathica, sample 139.

170

SVOBODOVÁ, ŠVÁBENICKÁ, REHÁKOVÁ, SVOBODOVÁ, SKUPIEN, ELBRA and SCHNABL

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Fig. 11. Kurovice section, lithology and vertical distribution of calpionellids and calcareous dinoflagellate cysts. TFZ — Tenuis–Fortis Zone; 

R Sbz — Remanei Subzone; CrZ — Crassicollaria Zone. Open circles indicate reworked specimens. Lithology after M. Bubík in Košťák et  

al. (2018). Calpionellid zones after Reháková & Michalík (1997), cyst zones sensu Reháková (2000).

171

J/K BOUNDARY AND HIGH RESOLUTION BIOSTRATIGRAPHY OF THE KUROVICE SECTION

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Fig. 12. Kurovice section, lithology and vertical distribution of calpionellids and calcareous dinoflagellate cysts. Open circles indicate reworked 

specimens. Lithology after M. Bubík in Košťák et al. (2018). Calpionellid zones after Reháková & Michalík (1997), cyst zones sensu Reháková 

(2000).

172

SVOBODOVÁ, ŠVÁBENICKÁ, REHÁKOVÁ, SVOBODOVÁ, SKUPIEN, ELBRA and SCHNABL

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

The Crassicollaria Zone (Remane et al. 1986), early to late 

Late Tithonian  (samples  42/43–84,  ~37.65–51.9  m)  is  sub-

divided into three subzones: 

The Remanei Subzone (Remane et al. 1986) (samples 42/43 

–51/52; ~37.65–42.9 m) is identified by very rare calpionel-

lids  Tintinnopsella remanei and Crassicollaria intermedia, 

followed by rare C. massutiniana, C. parvula and Calpionella 

alpina. 

The Intermedia  Subzone (Remane et al. 1986) (samples  

52–70; ~42.9–48.25 m) is clearly recognizable by a frequent 

and more diversified association with Calpionella alpina,  

C. grandalpina, C. elliptalpina,  Crassicollaria intermedia,  

C. massutiniana, C. parvula, C. brevis, and Tintinnopsella 

carpathica. In the lower part of this interval (sample 55) is  

the FO of Nannoconus globulus minor, so that the base of  

the NJT 17a Nannofossil Subzone is recorded (Fig. 16). Just 

above this bioevent, the last occurrence of Polycostella beck­

mannii was identified.

The  Colomi Subzone (Pop 1994) (samples 70/71–84; 

~48.25–51.9 m) is characterized by the dominance of Crassi­

collaria parvula, associated with scarce C. colomi and other 

deformed crassicollarians. Larger forms of Calpionella grand­

alpina  and  C. elliptalpina show rapid quantitative decline.  

The FO of Nannoconus wintereri was found in the upper part 

of this interval in sample 79/80. This bioevent defines the base 

of  the  NJT 17b  Subzone  which  has  a  short  stratigraphic  

interval spanning the uppermost Tithonian (Casellato 2010).  

The overlying bed, unit 81, yielded the first Nannoconus 

 globulus  globulus. 

The Calpionella Zone, Early Berriasian in age, is here sub-

divided again into three subzones. 

The Alpina Subzone (sensu Pop 1974; Remane et al. 1986) 

was first detected in the sample 85/86 and its top was recorded 

in sample 118; spanning the interval from ~51.9 m to 68.5 m 

with disappearance of large Calpionella  species and domi-

nation of small spherical specimens of Calpionella alpina 

(Calpionella alpina event sensu Kowal-Kasprzyk & Reháková 

2019). The species Crassicollaria parvula and Tintinnopsella 

carpathica are very rare. The base of the calcareous nannofos-

sil NKT Zone is marked by the FO of Nannoconus steinmannii 

minor in sample 92.

The Ferasini Subzone (Remane et al. 1986), Early Berriasian 

in age (samples 119–131; ~68.5–71.8 m) is distinguished by  

a decrease in the number of calpionellids. The Rema niella  fera­

sini was not recorded in sample 119, so, the base of the bio zone 

is fixed on the FO of R. duranddelgai (sample 119) and  

the appearance of other remaniellids. The FO of Nanno conus 

kamptneri kamptneri (NK-1 Zone) occurs in sample 124.

The Elliptica Subzone (Pop 1974), late Early Berriasian 

(samples 132–148; ~71.8–76.7 m) was established on the pre-

sence of Calpionella elliptica accompanied by rare specimens 

of the genera Calpionella,  Remaniella,  Tintinnopsella and 

Lorenziella. The FO of Speetonia colligata was registered in 

sample 133/134.

The species Nannoconus infans,  N. kamptneri  minor and  

N. steinmannii steinmannii appear sporadically in the limestone 

sediments at Kurovice, and for this reason their first occur-

rences are not used in our stratigraphic interpretations 

 

(Table 1).

The above-mentioned stratigraphic data are reinforced by 

that provided by palynomorphs.  The non-calcareous dino-

flagellate cysts Amphorula metaelliptica, Dingodinium tube­

rosum,  Systematophora areolata, and  S. silybum support  

a Tithonian age for sample 30a, the uppermost part of  

the Semiradiata Zone, and for sample 50 — an assignment to  

the Remanei Subzone. Dinoflagellate cysts of Berriasian age 

—  Achomosphaera neptunii, Prolixosphaeridium sp. A and 

Tehamamadinium evittii — were recorded in samples 105 and 

111/112 in the Alpina  Subzone and in the samples 132 and 

132/133 in the Elliptica Subzone.

Prolixosphaeridium  sp. A (sample 105) is mentioned by 

Monteil (in Stover et al. 1996) within the ammonite Jacobi 

Subzone (within the calpionellid Alpina Subzone) of the Early 

Berriasian. According to Leereveld (1995), the FO of Achomo­

sphaera neptunii (sample 111/112) is connected to the late 

Early Berriasian (uppermost part of the Jacobi ammonite 

Zone; calpionellid Elliptica Subzone; Reboulet et al. 2014, 

Wimbledon 2017) along with the FO of Dichadogonyaulax 

bensonii  (sample 132/133). Monteil (1992, 1993) correlates 

the FOs of both species in the Berriasian type section with  

the late Early Berriasian, the uppermost part of the Alpina 

Subzone, respectively. Monteil (1993) and Hunt (2004) com-

bine the first occurrences of the D. bensonii,  Endoscrinium 

campanula (sample 111/112) and Tehamadinium evittii (sam-

ple 105) as key range bases for correlation with the ammonite 

Grandis Subzone (upper Jacobi Zone) and Subalpina subzone 

(that is lowest Occitanica Zone). The similar relative age is 

indicated by calpionellids and nannofossils.

Paleoecology

According to Elbra et al. (2018a), the sediments at Kurovice 

were deposited on the continental slope during the Late 

Tithonian–Early Berriasian. The section is characterized by 

distal limestone sediments with sporadic turbidites. Košťák et 

al. (2018) supposed tsunami deposition/influence which might 

explain the presence of debris in the abyssal environment. 

Pelagic sediments are characterized by the large proportion of 

calcareous and siliceous marine microplankton which pre-

dominates over the turbidity material. These statements are in 

line with microfacies analyses (see above). The interpretation 

of  the  deposits  as  the  standard  microfacies  types  SMF 2,  

SMF 3 and SMF 4 indicates deposition on a deep shelf margin 

within facies zone FZ 3, changing into a basinal environment 

in its later/upper part, facies zone FZ 1 (Wilson 1975).

Sedimentation occurred under the influence of enhanced 

water dynamics, which affected nutrient supply and caused  

the periodical erosion and redeposition of older rocks. The nut-

rient supply is here demonstrated by the quantitative predo-

minance of radiolarians and sponge spicules. Calpionellids are 

generally rare and they are represented almost exclusively by 

173

J/K BOUNDARY AND HIGH RESOLUTION BIOSTRATIGRAPHY OF THE KUROVICE SECTION

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

hyaline species, which first appear in the Late Tithonian.  

The absence of typical microgranular chitinoidellids from  

the late Early Tithonian and the early Late Tithonian can be 

explained by the dominant presence of radiolarians. These 

microorganisms with silica tests preferred conditions rich in 

nutrients, something not suitable for calpionellids, and their 

development was probably inhibited. The location of the depo-

sitional area on the northern margin of Tethys (Golonka et al. 

2006) and the possible influence of incoming northern waters 

can also not be ignored.

The nannoconids Conusphaera  and  Polycostella beckma­

nnii are referred to as predominantly Tethyan taxa (Bown & 

Cooper 1998; Bown et al. 1998). Other nannofossils that con-

firm the Tethyan province are randomly found — Watznaueria 

manivitiae, Zeugrhabdotus embergeri, Cruciellipsis cuvillieri, 

and Speetonia colligata (Bown & Cooper 1998; Bown et al. 

1998). The small percentage of these taxa found in our study 

may be explained by the paleogeographic location on the mar-

gin of Tethys (Golonka et al. 2006; Svobodová et al. 2018). 

This region could have been affected by cold waters from 

Fig. 13. Kurovice section, lithology and vertical distribution of palynomorfs and non-calcareous cysts. Reworked specimens marked with 

dashed line. Lithology after M. Bubík in Košťák et al. (2018). 

174

SVOBODOVÁ, ŠVÁBENICKÁ, REHÁKOVÁ, SVOBODOVÁ, SKUPIEN, ELBRA and SCHNABL

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Fig. 14. Kurovice section, palynomorphs. Scale bar 10 µm. A–F, L–N, P sample 50 middle, G–K, O sample 132. A — Dingodinium tuberosum; 

B — aff. Oligosphaeridium patulum; C — Ctenidodinium ornatum; D — Chytroeisphaeridia chytroeides; E — Jansonia sp.; F — Pterospermella 

australiensis;  G — Tanyosphaeridium isocalamum;  H — radiolarian remnant; I — Circulodinium distinctum;  J — Gonyaulacysta  cf. 

 helicoidea;  K — Cribroperidinium  sp., fragment; L — Gleicheniidites senonicus;  M — Neoraistrickia  sp.;  N — Classopollis torosus;  

O — Densoisporites velatus; P — Corollina sp.

175

J/K BOUNDARY AND HIGH RESOLUTION BIOSTRATIGRAPHY OF THE KUROVICE SECTION

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Subboreal regions, such as the Russian Platform. The influence 

from higher latitudes might also be shown by the scarce pre-

sence of Nannoconus compressus (Fig. 7Y) mentioned in  

the Atlantic Ocean (Bralower et al. 1989; Casellato 2010). 

Stoykova et al. (2018) mentioned N. compressus from the SW 

Bulgaria, and Halásová in Bakhmutov et al. (2018) from  

the Crimea (southern Ukraine). The question remains whether 

these areas were also under marine influence from the north. 

Significantly higher percentages of nannoconids (up to 

20 % in the Berriasian), conusphers (up to 50 % in the Late 

Tithonian and 20–40 % in the Early Berriasian) and P. beck­

mannii (up to 20–30 % in Late Tithonian) are mentioned in 

Fig. 15. Kurovice section, non-calcareous dinoflagellate cysts. Scale bar 10 μm. A–F sample 49 middle, G–J sample 105, K–M sample 111/112, 

N–P sample 132/133. A — Systematophora daveyi;  B — Cometodinium habibii;  C — Stiphrosphaeridium dictyophorum, archeopyle;  

D — Systematophora orbifera; E — Pareodinia robusta; F — Gonyaulacysta helicoidea; H — Lithodinia sp.; K — Prolixosphaeridium 

anasillum;  L — Prolixosphaeridium  sp. A sensu Monteil (1993);  M — Endoscrinium campanula;  N — Systematophora areolata;  

O — Prolixosphaeridium granulosum; P — Dichadogonyaulax bensonii.

176

SVOBODOVÁ, ŠVÁBENICKÁ, REHÁKOVÁ, SVOBODOVÁ, SKUPIEN, ELBRA and SCHNABL

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Michalík et al. (2016) from the Pienniny Klippen Belt. Similar 

nannofossil percentages were mentioned by Svobodová & 

Košťák (2016) from further west in Tethys, on the southern 

passive margin of the Iberian Plate.

The occurrence of non-calcareous cavate cysts of Dingo­

dinium, proximate cysts of Cribroperidinium, rare chorate 

cysts, and the frequent presence of agglutinated microfora-

miniferal linings indicate a shallow sea and probably rewor-

king of terrestrial, brackish and shallow-water species into  

a deeper marine environment. Reworking is documented  

by the high diversity of Systematophora  species, which 

 characterize a littoral environment. Prasinophyte algae and 

acritarchs are known from the brackish to shallow marine con-

ditions (Batten 1996). They could have been flushed into  

the shallow sea and continuously transported into the deeper 

water.

Discussion

Compared to most localities in Tethys, small differences in 

calpionellid succession are evident. Chitinoidellids, the first 

calpionellid representatives have not been recorded 

(Svobodová et al. 2018). Their absence may be explained by 

the blooming of siliceous microorganisms which probably 

suppressed chitinoidellids. This phenomenon could also have 

been associated with cold water influence at the margin of 

Tethys.

The calcareous dinoflagellate Malmica Zone corresponds in 

the Kurovice sequence to magnetozone M 21r, as at Brodno 

(Central Western Carpathians; Michalík et al. 2009) and Lokút 

(Transdanubian range; Grabowski et al. 2010a, 2017). Even 

though aragonite shells did not survive sedimentation and 

early diagenesis of Kurovice limestones, magnetozones M 20r 

to M 17r in the upper part of the section may also be used to 

approximate the ammonite zones from Micracanthoceras 

microcanthum to Subthurmannia occitanica in the Vocontian 

Basin (Wimbledon et al. 2013; Frau et al. 2016a, b, c; Elbra et 

al. 2018b).

Nannofossil events and their stratigraphic correlations in  

the J/K boundary interval are more or less comparable with  

the other localities in Tethys. The first occurrence (FO) of 

Nannoconus globulus minor is situated in magnetozone M 19r 

and the Intermedia Subzone, as at Puerto Escaño (Svobodová 

&  Košťák  2016).  The  last  occurrence  (LO)  of  Polycostella 

beckmannii was recorded in the lower part of M 19n.2n, still in 

the Intermedia Subzone, as with the Brodno locality (Michalík 

et al. 2009). The FO of N. wintereri lies in the upper part of  

the  Crassicollaria  Zone,  in  M 19n.2n  as  with  Puerto  Escaño 

(Svobodová & Košťák 2016) and Le Chouet (Wimbledon et 

al. 2013). The FO of N. wintereri in M 19n.2n is also men-

tioned at Torre de’ Busi (Casellato 2010; Channell et al. 2010), 

before the FO of N. globulus globulus. In the Kurovice succes-

sion, the FO of N. globulus globulus occurs just above the FO 

of N. wintereri as with Le Chouet (Wimbledon et al. 2013). 

The FO of N. steinmannii minor was recorded in the lower part 

of the Alpina Subzone, approximately in the middle part of 

M 19n.2n  similar to the Strapková locality (Central Western 

Carpathians) — Michalík et al. (2016). At Brodno (Michalík 

et al. 2009), this bioevent also occurs in the lower part of  

the Alpina Subzone, but within the M 18r. At Torre de’ Busi, 

Casellato (2010) and Channell et al. (2010) mentioned the FO 

of N. steinmannii minor in subzone M 19n.1n, and the FO of  

N. kamptneri kamptneri in the middle part of the Ferasini 

Subzone and M 18n. Generally, Wimbledon (2017) mentions 

the FOs of N. wintereri and N. steinmannii minor in Western 

Tethys within M 19n.2n, immediately below the Calpionella 

Zone, J/K boundary. 

The nannofossil record clearly depends on the lithological 

character of the strata and this reality may affect the final 

stratigraphic and paleoenvironmental interpretations. As men-

tioned above, calcarenites provide scarce fragmen ted speci-

mens, whereas micrite limestones contain rare and poorly 

preserved nannofossils. In contrast, marlstone inter calations 

contain abundant and diversified assemblages. This could be 

the cause of the scarce and irregular occurrence of genus 

Nannoconus in some parts of the section, and the fact that  

the first occurrences of N. infans,  N. kamptneri minor  

and N. steinmannii steinmanni could not be relied upon for 

stratigraphic interpretations. Strata provided N. wintereri  

(Fig.  7AA, AB)  and  also  specimens  that  can  be  consider  as  

an early forms of this species (Fig. 7AC, AD). 

Nannofossils were not recognized in thin sections prepared 

for the calpionellid and facies investigation.

The quantitative predominance of the genera Watznaueria 

and  Cyclagelosphaera furnish proof of probable secondary 

post-mortem modification of the original nannoflora. Other 

placoliths that are easily destroyed are found scarcely and 

mostly as fragments.

Through the Kurovice sequence, the irregular occurrence of 

unknown specimens of Conusphaera was observed. They are 

forms characterized by a thinner structure than Conusphaera 

mexicana, and are here mentioned as Conusphaera sp. 1  

(Fig. 7I–L). As the ecological affinities of Conusphaera spp. 

are unclear (Bornemann et al. 2003; Tremolada et al. 2006), 

Conusphaera sp. 1 is an object suitable for further study. 

Moreover, specimens that look like C. mexicana cf. minor 

(Fig. 7P), but which reach larger dimensions, of about 5 µm, 

were recorded. The height given in the original description of 

C. mexicana minor does not exceed 4 µm (Bown & Cooper 

1989). The high content of calcium carbonate and oxic con-

ditions were also the cause of poor preservation of 

palynomorphs.

Sediments throughout the sequence contain reworked 

 calcareous dinoflagellates, such as Colomisphaera fibrata,  

C. tenuis, C. fortis,  Stomiosphaera moluccana, Commito­

sphaera pulla, Carpistomiosphaera tithonica, C. borzai, and 

Parastomiosphaera malmica, which have been  mentioned 

from the Late Oxfordian and Early Tithonian exclusively 

(Lakova et al. 1999; Reháková 2000; Ivanova & Kietzman 

2017). Sometimes during the Berriasian, calpionellids such as 

Calpionella grandalpina, C. elliptalpina, and Crassicollaria 

177

J/K BOUNDARY AND HIGH RESOLUTION BIOSTRATIGRAPHY OF THE KUROVICE SECTION

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Fig. 16. Integrated biostratigraphic correlations, microfacial interpretations, important bioevents and magnetostratipgraphy of the Kurovice 

section. Magnetostratigraphy as well as calpionellid, calcareous dinoflagellate and nannofossil zonations of 1–148 beds interval are modified 

from Elbra et al. (2018a). Black — normal polarity; white — reversed polarity; gray — unclear polarity due to lack of samples or stable mag-

netic component. Magnetostratigraphy of sample beds −1 to −29 is preliminary. TFZ — Tenius-Fortis Zone; MPBL — microfacies prevailed 

in biomicrite limestone; SMF — standard microfacies types; FZ — facies zones. Calpionellid zones after Reháková & Michalík (1997); 

dinoflagellate cyst zones sensu Reháková (2000).

178

SVOBODOVÁ, ŠVÁBENICKÁ, REHÁKOVÁ, SVOBODOVÁ, SKUPIEN, ELBRA and SCHNABL

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

massutiniana, were reworked from the Tithonian strata. 

 

The nannofossil species Parhabdolithus cf. marthae has been 

found in the lower part of section, in the NJT 16 zone, and it 

indicates a source of material of Early Sinemurian age, in  

the NJ 2a zone (Bown & Cooper 1998). Scarce Lotharingius 

hauffii  (NJ 5a–NJ 12a)  and  L. sigillatus  (NJ 5b–NJ 15a)  

(Table 1a, b) document source rocks in the upper Pliensbachian–

lower Callovian up to lower Oxfordian interval (Bown & 

Cooper 1998; Mattioli & Erba 1999). Reworked non-calca-

reous dinoflagellate cysts of Jurassic age (Systematophora 

areolata, Prolixosphaeridium anasillum) were found in sam-

ples 132 and 132–133 in the nannofossil NK-1 Zone and  

the Elliptica Subzone. The same strata also provided reworked 

Nannoconus compressus that is mentioned only in the Titho-

nian (Bralower et al. 1989; Casellato 2010). A relatively high 

number of Polycostella beckmannii which supposedly occurs 

exclusively in the Tithonian was found in sample 142s in  

the Berriasian (Fig. 4, Table 1c). The presence of these alloch-

thonous microorganisms is testimony to the dynamics of  

the depositional area and to repeated sediment erosion.

The ‘Nannofossil Calcification Event’ (NCE) sensu Borne-

mann et al. (2003) could be applied to the nannofossil record 

in the Kurovice section. However, it relates only to Assemblage 1 

and Assemblage 2 (sensu fig. 17 in Bornemann et al. 2003). 

Morphometric measurements were not an aim of this study. 

Conclusions

Detailed studies of microfacies and high-resolution recor-

ding of microfossils and calcareous nannofossils in the exten-

ded Kurovice section provide more precise stratigraphic results 

and paleoenvironmental interpretations across the Jurassic/

Cretaceous boundary interval. 

The stratigraphic range of the sequence is from the Early 

Tithonian calcareous dinoflagellate Malmica Zone up to  

the Early Berriasian calpionellid Elliptica Subzone, that is 

magnetozone M 21r to M 17r, and nannofossil zone NJT 15b  

to NK-1. The absence of calpionellid Chitinoidella Zone is 

explained by the blooms of silica preferring microorganisms 

which could have suppressed the development of microgranu-

lar chitinoidellids. The J/K Calpionella alpina boundary event 

indicated by size change of lorice of this species coincides 

with  the  NJT 17b  Subzone  and  M 19n.2n,  and  with  the  pre-

sence of Nannoconus wintereri. The dinoflagellate cysts, 

Prolixosphaeridium  sp. A sensu Monteil 1993, Tehama ma­

dinium evittii, Achomosphaera neptunii, Endoscrinium cam­

panula, and Dichadogonyaulax bensonii, that are present in 

the upper part of the section support an Early Berriasian age. 

The identified standard microfacies types SMF 2, SMF 3 and 

SMF 4 suggest an origin for the deposits here on the deep shelf 

margin, facies zone FZ 3, passing in time into the more distal 

basinal conditions, in facies zone FZ 1, with standard micro-

facies types SMF 2 and SMF 3 being formed. 

The sediments bear the marks of the enhanced water dyna-

mics that caused nutrient mobility, periodical erosion and 

overflow of sediments from the coeval and older Jurassic 

strata including also littoral and brackish palynomorphs 

accompanied by additional supply of terrestrial pollen and 

spores. 

The nannofossil record and nannofossil preservation depend 

on the lithological character of deposits. The quantitative pre-

dominance of the genera Watznaueria and Cyclagelosphaera 

furnish proof of the probable secondary post-mortem modifi-

cation of the nannoflora. Nannoconids — Conusphaera and 

Polycostella — and placoliths of Watznaueria manivitiae, 

Zeugrhabdotus embergeri,  Cruciellipsis cuvillieri, and also 

Speetonia colligata, which are referred to as predominantly 

Tethyan taxa, formed a significantly small percentage in 

assemblages as compared to ones of the same age in other 

regions of Tethys. This may be explained by the location of 

depositional area at the margin of Tethys where there might 

have been some influence of cold waters coming from boreal 

regions.

Acknowledgements:  We  would  like  to  thank  M.  Košťák,  

L. Vaňková, J. Rantuch, M. Bubík, K. Čížková and Š. Kdýr  

for their help during field work and measurements and for 

valuable cooperation. Special thanks to Petr Pruner for the lea-

ding of the project and for valuable consultations. The authors 

are grateful to Prof. Paul Bown of London´s Global University 

for consulting on the correct determination of some strati-

graphically important nannofossil species. The authors are also 

grateful to William A.P. Wimbledon, Daniela Boorová and 

Kristalina Stoykova for their valuable comments and improve-

ments of the manuscript. The research was supported by  

the research plan of the Institute of Geology of the Czech 

Academy of Sciences, No. RVO67985831 and by the Czech 

Science Foundation, project No. 16-09979S „Integrated multi-

proxy study of the Jurassic-Cretaceous boundary in marine 

sequences: contribution to global boundary definition“. Micro-

facial and calpionellid investigations were financialy suppor-

ted by the project of the Slovak Grant Agency APVV-14-0118 

and by VEGA 2/0034/16 Projects. This work is a contribution 

of the Berriasian Working Group of the International Subcom-

mission on Cretaceous Stratigraphy (ICS).

References

Andreini G., Caracuel J.E. & Parisi G. 2007: Calpionellid biostrati-

graphy of the Upper Tithonian–Upper Valanginian interval in 

Western Sicily (Italy). Swiss J. Geosci. 100, 179–198. 

Andrusov D. 1933: Minor Reports on Geology of the  Moravia– 

Silesian Carpathians. Věstník  Státního  geologického  Ústavu 

Československé republiky 9, 194–199 (in Czech).

Andrusov D. 1945: Geological research of the West Carpathian  Inner 

part of Klippen Belt IV, V. Práce  Št.  geol.  Úst. 13, 1–176  

(in Slovak).

Bakhmutov V.G., Halásová E., Ivanova D.K., Józsa Š., Reháková D. 

& Wimbledon W.A.P. 2018: Biostratigraphy and magneto-

stratigraphy of the uppermost Tithonian-Lower Berriasian in  

the Theodosia area of Crimea (southern Ukraine). Geol. Quar­

terly 62, 2, 197–236.

179

J/K BOUNDARY AND HIGH RESOLUTION BIOSTRATIGRAPHY OF THE KUROVICE SECTION

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Batten D.J. 1996: Palynofacies and palaeoenvironmental interpreta-

tions. In: Jansonius J., McGregor D.C. (Eds.): Palynology: 

 

Principles and Applications 3. AASP Foundation,  Dallas,   

1011–1064.

Bornemann A., Aschwer U. & Mutterlose J. 2003: The impact of 

 calcareous nannofossils on the pelagic arbonate accumulation 

across the Jurassic–Cretaceous boundary. Palaeogeogr. Palaeo­

climatol. Palaeoecol. 199, 187–228.

Bown P.R. & Cooper M.K.E. 1989: Conical nannofossils in the 

 Mesozoic. In: Crux J.A. & van Heck S.E. (Eds.): Nannofossils 

and their applications, Ellis Horwood, Chichester, 98–106.

Bown P.R. & Cooper M.K.E. 1998: Jurassic. In: Bown P.R. (Ed.): 

Calcareous Nannofossil Biostratigraphy. British Micropalaeon­

tological Society, London, 34–85.

Bown P.R., Rutledge D.C., Crux J.A. & Gallagher L.T. 1998: Lower 

Cretaceous. In: Bown P.R. (Ed.): Calcareous Nannofossil Bio-

stratigraphy.  British Micropalaeontological Society, London, 

86–131.

Bralower T.J., Monechi S. & Thierstein H.S. 1989: Calcareous 

 Nannofossil Zonation of the Jurasssic–Cretaceous Boundary 

 Interval and Correlation with the Geomagnetic Polarity Time-

scale. Mar

. Micropaleontol. 14, 153–235.

Casellato C.E. 2010: Calcareous nannofossil biostratigraphy of Upper 

Callovian–Lower Berriasian successions from the Southern 

Alps, North Italy. Rivista Italiana di Paleontologia e Stratigrafia 

16, 3, 357–404. 

Channell J.E.T., Casellato C.E., Muttoni G. & Erba E. 2010: Magne-

tostratigraphy, nannofossil stratigraphy and apparent polar 

 wander for Adria–Africa in the Jurasic–Cretaceous boundary 

interval.  Palaeogeogr. Palaeoclimatol. Palaeoecol. 293, 

 

51–75.

Dunham R.J. 1962: Classification of carbonate rocks according to 

depositional texture. In: Ham W.E. (Ed.): Classification of car-

bonate rocks. Am. Assoc. Petrol. Geol. Memoir 1, 108–121.

Elbra T., Bubík M., Reháková D., Schnabl P., Čížková K., Pruner P., 

Kdýr Š., Svobodová A. & Švábenická, L. 2018a: Magneto- and 

biostratigraphy across the Jurassic–Cretaceous boundary in  

the Kurovice section, Western Carpathians, Czech Republic. 

Cretaceous Res. 89, 211–223.

Elbra T., Schnabl P., Čížková K., Pruner P., Kdýr Š., Grabowski J., 

Reháková D., Svobodová A., Frau C. & Wimbledon W.A.P. 

2018b: Palaeo- and rock magnetic investigations across Juras-

sic–Cretaceous boundary at St Bertrand’s Spring, Drôme, France 

— Applications to magnetostratigraphy. Studia Geophysica et 

Geodaetica 62, 323–338.

Eliáš M., Martinec P., Reháková D. & Vašíček Z. 1996: Geology and 

stratigraphy  of  the  Kurovice  Limestone  and  Tlumačov  Marl 

 Formation at the Kurovice quarry (Upper Jurassic–Lower Creta-

ceous, Outer Western Carpathians, Czech Republic).  Věstník 

Českého geologického ústavu 71, 3, 259–275 (in Czech).

Fensome R.A. & Williams G.L. 2004:  The Lentin and Williams 

 Index of fossil dinoflagellates: 2004 edition. American Asso­

ciation of Stratigraphic Palynologists Contribution Series 42, 

1–909.

Fensome R.A., Williams G.L. & MacRae R.A. 2009: Late Cretaceous 

and Cenozoic fossil dinoflagellates and other palynomorphs 

from the Scotian Margin, offshore Eastern Canada. J. Syst. 

 Palaeontol. 7, 1, 1–79. 

Flügel E. 2004:  Microfacies of Carbonate Rocks. Springer­Verlag, 

Berlin, 1–976.

Folk R.L. 1959: Practical classification of limestone. Amer. Assoc. 

Petrol. Geol. Bull. 43, 1–38.

Frau C., Bulot L.G., Reháková D., Wimbledon W.A.P. & Ifrim C. 

2016a: Revision of the ammonite index species Berriasella 

 jacobi Mazenot, 1939 and its consequences for the biostrati-

graphy of the Berriasian Stage. Cretaceous Res. 66, 94–114.

Frau C., Bulot L.G., Wimbledon W.A.P. & Ifrim C. 2016b: Sys te-

matic palaeontology of the Perisphinctoidea across the Jurassic/

Cretaceous boundary at Le Chouet (Drôme, France) and 

 

its biostratigraphic implications. Acta Geologica Polonica 66,  

157–177.

Frau C., Bulot L.G., Wimbledon W.A.P. & Ifrim C. 2016c: Upper 

 Tithonian ammonites (Himalayitidae Spath, 1925 and Neocomi-

tidae Salfeld, 1921) from Charens (Drôme, France). Geol. 

 Carpath. 67, 6, 543–559.

Glöckner E.F. 1841: Über den Jurakalk von Kurowitz in Mähren und 

über den darin vorkommenden Aptychus imbricatus. Verh. 

 Leopold Carol. Akad. naturf. 19, 2, 73–308. 

Golonka J., Gahagan L., Krobicki M., Marko F., Oszczypko N. & 

Ślączka A. 2006: Plate-tectonic evolution and paleogeography 

of the Circum–Carpathian region. In: Golonka J. & Picha F. 

(Eds.): The Carpathians and their foreland: Geology and hydro-

carbon resources. AAPG Memoir 84, 11–46.

Grabowski J. 2011: Magnetostratigraphy of the Jurassic/Cre-   

ta 

ceous boundary interval in the Western Tethys and its 

 cor relation with other regions: a review. Volumina Jurassica 9, 

105–128.

Grabowski  J.  &  Pszczółkowski  A.  2006:  Magneto-  and  biostrati-

graphy of the Tithonian–Berriasian pelagic sediments in the Tatra 

Mountains (Central Western Carpathians, Poland): sedimentary 

and rock magnetic changes at the Jurassic/Cretaceous boundary. 

Cretaceous Res. 27, 398–417.

Grabowski J., Haas J., Márton E. & Pszczółkowski A. 2010a: Mag-

neto- and biostratigraphy of the Jurassic/Cretaceous boundary  

in the Lókút section (Transdanubian range, Hungary). Studia 

Geophysica et Geodaetica 54, 1–26.

Grabowski J., Michalík J., Pszczółkowski A. & Lintnerová O. 2010b: 

Magneto-, and isotope stratigraphy around the Jurassic/Creta-

ceous boundary in the Vysoká Unit (Malé Karpaty Mountains, 

Slovakia): correlations and tectonic implications. Geol. Carpath. 

61, 4, 309–326.

Grabowski J., Schnyder J., Sobień K., Koptíková L., Krzemiński L., 

Pszczółkowski A., Hejnar E. & Schnabl P. 2013: Magnetic sus-

ceptibility and spectral gamma logs in the Tithonian–Berriasian 

pelagic carbonates in the Tatra Mts. (Western Carpathians, 

 Poland): Palaeoenvironmental changes at the Jurassic/Creta-

ceous boundary. Cretaceous Res. 43, 1–17.

Grabowski J., Haas J., Stoykova K., Wierzbowski H. & Brański P. 

2017: Environmental changes around Jurassic/Cretaceous tran-

sition: New nannofossil, chemostratigraphic and stable isotope 

data from the Lókút section (Transdanu bian range, Hungary). 

Sediment. Geol. 360, 54–72.

Guzhikov A.Y., Arkad’ev VV., Baraboshkin E.Y., Bagaeva M.I., 

 Piskunov V.K., Rud’ko S.V., Perminov V.A. & Manikin A.G. 

2012: New sedimentological, bio-, and magnetostratigraphic 

data on the Jurassic-Cretaceous boundary interval of Eastern 

Crimea (Feodosiya). Stratigraphy and Geological Correlation 

20, 261–294.

Hoedemaeker J.P., Janssen N.M.M., Casellato C.E., Gardin S., 

 Reháková D. & Jamrichová M. 2016: Jurassic–Cretaceous 

 boun dary in the Río Argos succession (Caravaca, SE Spain). 

Integra ted biostratigraphy of section Z along the Barranco de 

Tollo. Revue de Paleobiologie, 35,1, 111–247.

Houša V., Krs M., Krsová M. & Pruner P. 1996: Magnetostratigraphic 

and micro-paleontological investigations along the Jurassic–

Cretaceous boundary strata, Brodno near Žilina (Western Slo-

vakia). Geol. Carpath. 47, 3, 135–151.

Houša V., Krs M., Krsová M., Man O., Pruner P. & Venhodová D. 

1999: High-resolution magnetostratigraphy and micro paleon -

tology  across  the  J/K  boundary  strata  at  Brodno  near  Žilina, 

Western Slovakia: summary results. Cretaceous Res. 20, 

 699–717.

180

SVOBODOVÁ, ŠVÁBENICKÁ, REHÁKOVÁ, SVOBODOVÁ, SKUPIEN, ELBRA and SCHNABL

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Houša  V.,  Pruner  P.,  Zakharov  V.A.,  Košťák  M.,  Chadima  M.,  

Rogov M.A., Šlechta S. & Mazuch M. 2007: BorealeTethyan 

correlation of the Jurassic/Cretaceous boundary interval by mag-

neto- and biostratigraphy. Stratigraphy and Geological Correla­

tion 15, 297–309.

Hunt C.O. 2004: Palynostratigraphy of the classic Portland and 

 Purbeck sequences of Dorset, southern England, and the correla-

tion of Jurassic–Cretaceous boundary beds in the Tethyan and 

Boreal realms. In: Beaudouin A.B. & Head M.J. (Eds.): The 

Paly nology and Micropaleontology of Boundaries. Geol. Soc. 

London, Spec. Publ. 230, 257–273.

Ivanova D.K. & Kietzmann D.A. 2017: Calcareous dinoflagellate 

cysts from the Tithonian–Valanginian Vaca Muerta Formations 

in the southern Mendoza area of the Neuquén Basin, Argentina. 

Journal of South American Earth Sciences 77, 150–169. 

Kietzmann D.A. 2017: Chitinoidellids from the Early Tithonian– 

Early Valanginian Vaca Muerta Formation in the Northern 

Neuquén Basin, Argentina. Journal of South American Earth 

Sciences 76, 152–164. 

Košťák M., Vaňková L., Mazuch M., Bubík M. & Reháková D. 2018: 

Cephalopods,  small  vertebrate  fauna  and  stable  isotope  (δ

13

C, 

δ

18

O) record from the Jurassic–Cretaceous transition (Calpio­

nella Zone) of the Outer Western Carpathians, Kurovice quarry 

(Czech Republic). Cretaceous Res. 92, 43–65.

Kowal-Kasprzyk J. & Reháková D. 2019: A morphometric analysis of 

loricae of the genus Calpionella  and its significance for the 

 

Jurassic/Cretaceous boundary interpretation. Newsletter on 

 Stratigraphy 52, 1, 33–54.

Lakova I. & Petrova S. 2013: Towards a standard Tithonian to 

 Valanginian calpionellid zonation of the Tethyan Realm. Acta 

Geologica Polonica 63, 201–221.

Lakova I., Stoykova K. & Ivanova D. 1999: Calpionellid, nannofossil 

and calcareous dinocyst bioevents and intergrated biochrono-

logy of the Tithonian to Valangian in the Western Balkanides, 

Bulgaria. Geol. Carpath. 50, 2, 151–168.

Lakova I., Grabowski J., Stoykova K., Petrova S., Reháková D., So-

bień  K.  &  Schnabl  P.  2017:  Direct  correlation  of  Tithonian/ 

Berriasian boundary calpionellid and calcareous nannofossil 

events in the frame of magnetostratigraphy: new results from  

the West Balkan Mts., Bulgaria, and review of existing data. 

Geologica Balcanica 46, 2, 47–56. 

Leereveld H. 1995: Dinoflagellate cysts from the Lower Cretaceous 

Río Argos succession (SE Spain). LPP Contribution Series 2, 

1–175.

López-Martínez R., Barragán R., Reháková D. & Cobiella-Reguera J.L. 

2013: Calpionellid distribution and microfacies across the Juras-

sic/Cretaceous boundary in western Cuba (Sierra de los Órga-

nos). Geol. Carpath. 64, 195–208.

López-Martínez R., Barragán R. & Reháková D. 2015: Calpionellid 

biostratigraphy across the Jurassic/Cretaceous Boundary in San 

José de Iturbide, Nuevo León, Northeastern Mexico. Geol. 

 Quarterly 59, 581–592.

Lukeneder A., Halásová E., Kroh A., Mayrhofer S., Pruner P., 

 Reháková D., Schnabl P., Sprovieri M. & Wagreich M. 2010: 

High resolution stratigraphy of the Jurassic-Creta ceous boun-

dary interval in the Gresten Klippenbelt (Aus 

tria). Geol. 

 Carpath.  61, 5, 365–381.

Mattioli E. & Erba E. 1999: Synthesis of calcareous nannofossil 

events in Tethyan Lower and Middle Jurassic sections. Rivista 

Italiana di Paleontologia e Stratigrafia 105, 3, 14–176.

Michalík J. 2011 : Mesozoic paleoeography and facies distribution in 

the Northern Mediterrenean Tethys from Western Carpathians 

view. Iranian Journal of Earth Sciences 3, 194–203.

Michalík J. & Reháková D. 2011: Possible markers of the Jurassic/

Cretaceous boundary in the Mediterranean Tethys — A review 

and state of art. Geoscience Frontiers 2, 475–490.

Michalík J., Reháková D. & Peterčáková M. 1990: To the stratigraphy 

of Jurassic-Cretaceous boundary beds in the Kysuca sequence of 

the West  Carpathian  Klippen  belt  Brodno  section  near  Žilina. 

Zemní Plyn a Nafta 9b, 57–71.

Michalík J., Reháková D., Halásová E. & Lintnerová O. 2009:  

The Brodno section –— a potential regional stratotype of the 

Jurassic/Cretaceous boundary (Western Carpathians). Geol. 

Carpath. 60, 3, 213–232.

Michalík J., Reháková D., Grabowski J., Lintnerová O., Svobodová A., 

Schlögl J., Sobień K. & Schnabl P. 2016: Stratigraphy, plankton 

communities, and magnetic proxies at the Jurassic/Cretaceous 

boundary in the Pieniny Klippen Belt (Western Carpathians, 

 Slovakia).  Geol. Carpath. 67, 4, 303–328.

Mišík M. 1971: Observations concerning calcite veinlets in carbonate 

rocks. J. Sediment. Petrol. 41, 2, 450–460.

Monteil E. 1992 : Kystes de dinoflagellés index (Tithonique-Valangi-

nien) du Sud-Est de la France: Proposition d´une nouvelle zona-

tion palynologique. Revue de Paléobiologie 11, 1, 299–306. 

Monteil E. 1993: Dinoflagellate cyst biozonation of the Tithonian and 

Berriasian of south-east France. Correlation with the sequence 

stratigraphy. Bulletin des Centres de Recherches Exploration. 

Production Elf­Aquitaine 17, 249–273.

Nowak W. 1968: Stomiosphaerids of the Cieszyn Beds (Kimme-

ridgian–Hauterivian) in the Polish Cieszyn Silesia and their 

 stratigraphical  value.  Rocznik Polskiego Towarzystwa Geolo­

gicznego 38, 2, 275–327.

Petrova S., Rabrenović D., Lakova I., Koleva-Rekalova E., Ivanova D., 

Metodiev L. & Malešević N. 2012: Biostratigraphy and micro-

facies of the pelagic carbonates across the Jurassic/Cretaceous 

boundary in eastern Serbia (Stara Planina–Poreč Zone). Geolo­

gica Balcanica 41, 53–76.

Pícha F.J., Stráník Z. & Krejčí O. 2006: Geology and hydrocarbon 

resources of the Outer Western Carpathians and their foreland, 

Czech Republic. In: Golonka J. & Pícha, F.J. (Eds.): The Car-

pathians and Their Foreland: Geology and Hydrocarbon 

 Resources.  AAPG Memoir 84, 49–175.

Pop G. 1974 : Les zones des Calpionelles Tithonique–Valanginiens 

du silon de Resita (Carpates meridionales). Revue Roumaine de 

Géologie Géophysique et Géographie, sér. Géol 18, 109–125.

Pop G. 1994: Calpionellid evolutive events and their use in biostrati-

graphy. Romanian Journal of Stratigraphy 76, 7–24.

Pruner P., Houša V., Olóriz F., Košťák M., Krs M., Man O., Schnabl P., 

Venhodová D., Tavera J.M. & Mazuch M. 2010: High-resolution 

magnetostratigraphy and biostrati graphic zonation of the Juras-

sic/Cretaceous boundary strata in the Puerto Escaño section 

(southern Spain). Cretaceous Res. 31, 2, 192–206.

Reboulet S., Szives O., Aguirre-Urreta B., Barragán R., Company M., 

Idakieva V., Ivanov M., Kakabadze M.V., Moreno-Bedmar J.A., 

Sandoval J. & Baraboshkin E.J. 2014: Report on the 5

th

 Interna-

tional Meeting of the IUGS Lower Cretaceous Ammonite Wor-

king Group, the Kilian Group (Ankara, Turkey, 31

st

 August 

2013). Cretaceous Res. 50, 126–137.

Reháková D. 2000: Evolution and distribution of the Late Jurassic 

and Early Cretaceous calcareous dinoflagellates recorded in  

the Western Carpathians pelagic carbonate facies. Mineralia 

 Slovaca 32, 79–88.

Reháková D. & Michalík J. 1997: Evolution and distribution of cal-

pionellids –— the most characteristic constituents of Lower Cre-

taceous Tethyan microplankton. Cretaceous Res. 18, 493–504. 

Remane J., Borza K., Nagy I., Bakalova-Ivanova D., Knauer J.,  

Pop G. & Tardi-Filácz E. 1986: Agreement on the subdivision of 

the standard calpionellid zones defined at the 2nd Planktonic 

Conference Roma 1970. Acta Geologica Hungarica 29, 5–14.

Řehánek J. 1992: Valuable species of cadosinids and stomiosphaerids 

for determination of the Jurassic–Cretaceous boundary (vertical 

distribution, biozonation). Scripta 22, 117–122.

181

J/K BOUNDARY AND HIGH RESOLUTION BIOSTRATIGRAPHY OF THE KUROVICE SECTION

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Schnabl P., Pruner P. & Wimbledon W.A.P. 2015: A review of magne-

tostratigraphic results from the Tithonian–Berriasian of Nordvik 

(Siberia) and possible biostratigraphic constraints. Geol. 

 Carpath.  66, 6, 489–498.

Skupien P., Ryba J. & Doupovcová P. 2016: The study of deep marine 

sediments of Jurassic and Cretaceous boundary interval on 

 Bruzovice  profile.  Geoscience Research Reports 49, 209–213.

Stover L.E., Brinkhuis H., Damassa S.P., de Verteuil L., Helby R.J., 

Monteil E., Partridge A.D., Powell A.J., Riding J.B., Smelror M. 

& Williams G.L. 1996: Mesozoic–Tertiary dinoflagellates, 

acritarchs and prasinophytes. In: Jansonius J. & McGregor D.C. 

(Eds.): Palynology: Principles and Applications, vol. 2. Ameri­

can Association of Stratigraphic Palynologists Foundation, 

 Dallas,  641–750.

Stoykova K., Idakieva V., Ivanov M. & Reháková D. 2018: Calca-

reous nannofossil and ammonite integrated biostratigraphy 

across the Jurassic–Cretaceous boundary strata of the Kopanista 

composite section (West Stradnogorie Unit, southwest Bul-

garia). Geol. Carpath. 69, 2, 199–217.

Svobodová A.  &  Košťák  M.  2016:  Calcareous  nannofossils  of  the 

Jurassic/Cretaceous boundary strata in the Puerto Es caño section 

(southern Spain) — biostratigraphy and palaeo ecology. Geol. 

Carpath. 67, 3, 223–238.

Svobodová A., Reháková D. & Švábenická L. 2017: High resolution 

stratigraphy across the Jurassic–Cretaceous boundary in the 

Kurovice Quarry, Outer Western Carpathians, Czech Republic. 

In: Jurassica XIII, Poland, June 19–23, 2017. Abstracts and field 

trip quidebook, 57.

Svobodová  A.,  Reháková  D.,  Švábenická  L.  &  Vašíček  Z.  2018:  

 Evidence for short-time connection of the NW margin of Tethys 

and Subboreal realm during the Late Tithonian and Early Berria-

sian in the Outer Western Carpathians. In: 19

th

 Czech–Slovak– 

Polish Palaeontological Conference & MIKRO 2018 workshop, 

Abstract Book. Folia Musei Rerum naturalium Bohemiae Occi­

dentalis Geologica et Paleobiologica, Spec. Vol., 86.

Švábenická L. 2012: Nannofossil record across the Cenomanian– 

Coniacian interval in the Bohemian Cretaceous Basin and 

Tethyan foreland basins (Outer Western Carpathians), Czech 

 Republic.  Geol. Carpath. 63, 3, 201–217.

Švábenická L., Bubík M., Krejčí O. & Stráník Z. 1997: Stratigraphy 

of Cretaceous sediments of the Magura Group of Nappes in 

Moravia (Czech Republic). Geol. Carpath. 48, 3, 179–191.

Švábenická L., Reháková D. & Svobodová A. 2017: Calpionellid and 

nannofossil correlation across the Jurassic–Cretaceous boundary 

interval, Kurovice Quarry, Outer Western Carpathians. In: 

 

10

th

 Inter national Symposium on the Cretaceous Vienna, August 

21–26, 2017. Abstracts, 252.

Tremolada F., Bornemann A., Bralower T.J., Koeberl C. & van de 

Schootbrugge B. 2006: Paleoceanographic changes across the 

Jurassic/Cretaceous boundary: The calcareous phytoplankton 

response. Earth Planet. Sci. Lett. 241, 361–371.

Vašíček Z. & Reháková D. 1994: Biostratigraphical investigation at 

the Kurovice quarry in 1993 (Outer Carpathians, Tithonian–

Lower Valanginian). Geol. Výzk. Mor. Slez.  v r. 1993, 28 (in 

Czech).

Wilson J.L. 1975: Carbonate facies in geologic history. Springer, 

 Berlin,  1–471.

Wimbledon W.A.P. 2017: Developments with fixing a Tithonian/ 

Berriasian (J/K) boundary. Volumina Jurassica XV, 181–186.

Wimbledon W.A.P., Casellato C.E., Reháková D., Bulot L.G., 

 

Erba E., Gardin S., Verreussel R.M.C.H., Munsterman D.K. & 

Hunt C.O. 2011: Fixing a basal Berriasian and Jurassic/Creta-

ceous (J/K) boundary — is there perhaps some light at the end of 

the tunnel? Rivista Italiana di Paleontologie e Stratigrafia 117, 

295–307.

Wimbledon W.A.P., Reháková D., Pszczółkowski A., Casellato C.E., 

Halásová  E.,  Frau  C.,  Bulot  L.G.,  Grabowski  J.,  Sobień  K., 

 Pruner  P.,  Schnabl  P.  &  Čížková  K.  2013: An  account  of  the  

bio- and magnetostratigraphy of the Upper Tithonian–Lower 

Berriasian interval at Le Chouet, Drôme (SE France). Geol. 

 Carpath. 64, 6, 437–460.

Young J.R., Bown P.R. & Lees J.A. (Eds.) 2013: Nannotax3 website. 

International Nannoplankton Association.  http://ina.tmsoc.org/

Nannotax3.

Appendix

Lists of microfossils and calcareous nannofossils mentioned in the text in alphabetical order: 

Calcareous nannofossils

Assipetra infracretacea (Thierstein, 1973) Roth, 1973

Biscutum ellipticum (Górka, 1957) Grün in Grün and Allemann, 

1975

Conusphaera mexicana subsp. mexicana Trejo, 1969

Conusphaera mexicana subsp. minor (Trejo, 1969) Bown & Cooper, 

1989

Cretarhabdus conicus Bramlette and Martini, 1964

Cruciellipsis cuvillieri (Manivit, 1966) Thierstein, 1973

Cyclagelosphaera argoensis Bown, 1992

Cyclagelosphaera deflandrei (Manivit, 1966) Roth, 1973

Cyclagelosphaera margerelii Noël, 1965

Cyclagelosphaera reinhardtii (Perch-Nielsen, 1968) Romein, 1977

Diazomatholithus lehmannii Noël, 1965

Discorhabdus ignotus (Górka, 1957) Perch-Nielsen, 1968

Ethmorhabdus gallicus Noël, 1965

Ethmorhabdus hauterivianus (Black, 1971) Applegate et al. in 

Covington and Wise, 1987

Faviconus multicolumnatus Bralower in Bralower et al., 1989

Helenea chiastia Worsley, 1971

Helenea staurolithina Worsley, 1971

Hexalithus noeliae Loeblich and Tappan, 1966

Hexalithus strictus Bergen, 1994

Lithraphidites carniolensis Deflandre, 1963

Lotharingius hauffii Grün and Zweili in Grün et al., 1974

Lotharingius sigillatus (Stradner, 1961) Prins in Grün et al., 1974

Manivitella pemmatoidea (Deflandre in Manivit, 1965) Thierstein, 

1971

Miravetesina favula Grün in Grün and Allemann, 1975

Nannoconus colomii (de Lapparent 1931) Kamptner 1938

Nannoconus compressus Bralower and Thierstein in Bralower et al., 

1989

Nannoconus erbae Casellato 2010

Nannoconus globulus subsp. globulus Brönnimann, 1955

Nannoconus globulus subsp. minor (Brönnimann, 1955) Bralower in 

Bralower et al., 1989

Nannoconus infans Bralower in Bralower et al., 1989

Nannoconus kamptneri subsp. kamptneri Brönnimann, 1955

Nannoconus kamptneri subsp. minor (Brönnimann, 1955) Bralower 

in Bralower et al., 1989

Nannoconus puer Casellato 2010

Nannoconus steinmannii subsp. minor (Kamptner, 1931) Deres and 

Achériéguy, 1980

Nannoconus steinmanni subsp. steinmannii Kamptner, 1931

Nannoconus wintereri Bralower and Thierstein, in Bralower et al. 1989

Parhabdolithus marthae Deflandre in Deflandre and Fert, 1954

182

SVOBODOVÁ, ŠVÁBENICKÁ, REHÁKOVÁ, SVOBODOVÁ, SKUPIEN, ELBRA and SCHNABL

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2019, 70, 2, 153–182

Pickelhaube furtiva (Roth, 1983) Applegate et al. in Covington and 

Wise, 1987

Polycostella beckmannii Thierstein, 1971

Polycostella senaria Thierstein, 1971

Retecapsa octofenestrata (Bralower in Bralower et al., 1989) Bown 

in Bown and Cooper, 1998

Retecapsa schizobrachiata (Gartner, 1968) Grün in Grün and 

Allemann, 1975

Retecapsa surirella (Deflandre and Fert, 1954) Grün in Grün and 

Allemann, 1975

Rotelapillus crenulatus (Stover, 1966) Perch-Nielsen, 1984

Speetonia colligata Black, 1971

Umbria granulosa Bralower and Thierstein in Bralower et al., 1989

Watznaueria barnesiae (Black in Black & Barnes, 1959) Perch-

Nielsen, 1968

Watznaueria biporta Bukry, 1969

Watznaueria britannica (Stradner, 1963) Reinhardt, 1964

Watznaueria communis Reinhardt, 1964

Watznaueria cynthae Worsley, 1971

Watznaueria fossacincta (Black, 1971) Bown in Bown and Cooper, 

1989

Watznaueria manivitiae Bukry, 1973

Watznaueria ovata Bukry, 1969

Zeugrhabdotus cooperi Bown, 1992

Zeugrhabdotus embergeri (Noël, 1959) Perch-Nielsen, 1984

Zeugrhabdotus fluxus Casellato, 2010

Calcareous dinoflagellates

Cadosina semiradiata cieszynica (Nowak, 1966)

Cadosina semiradiata fusca (Wanner, 1940)

Cadosina semiradiata semiradiata (Wanner, 1940)

Carpistomiosphaera borzai (Nagy,1966)

Carpistomiosphaera tithonica Nowak,1968

Colomisphaera carpathica (Borza, 1964)

Colomisphaera cieszynica Nowak, 1968

Colomisphaera fibrata (Nagy, 1966)

Colomisphaera fortis Řehánek, 1982

Colomisphaera lapidosa (Vogler, 1941)

Colomisphaera minutissima sensu Nowak 1968

Colomisphaera pieniniensis (Borza, 1969) 

Colomisphaera radiata (Vogler, 1941) 

Colomisphaera tenuis (Nagy, 1966)

Committosphaera czestochowiensis Řehánek, 1993

Committosphaera ornata (Nowak, 1968)

Committosphaera pulla (Borza, 1964) 

Committospahera sublapidosa (Vogler 1941)

Parastomiosphaera malmica (Borza, 1964)

Stomiosphaera moluccana Wanner, 1940

Stomiosphaerina proxima Řehánek,1987

Calpionellids 

Calpionella alpina Lorenz,1902

Calpionella elliptalpina Nagy, 1986

Calpionella elliptica Cadisch 1932

Calpionella grandalpina Nagy, 1986

Crassicollaria brevis Remane, 1962

Crassicollaria intermedia (Durand-Delga, 1957)

Crassicollaria massutiniana (Colom, 1948)

Crassicollaria parvula Remane, 1962

Lorenziella hungarica Knauer and Nagy, 1964

Praetintinnopsella andrusovi Borza, 1969

Remaniella borzai Pop, 1996

Remaniella catalanoi Pop, 1996

Remaniella colomi Pop, 1996

Remaniella duranddelgai Pop,1996 

Remaniella ferasini (Catalano, 1965)

Tintinnopsella carpathica (Murgeanu and Filipescu,1933)

Tintinnopsella doliphormis (Colom, 1939)

Tintinnopsella remanei Borza, 1969

Palynomorphs including non-calcareous dinoflagellates

Achomosphaera neptuni (Eisenack, 1958) Davey and Williams, 1966

Amphorula dodekovae Zotto et al., 1987

Amphorula metaelliptica Dodekova, 1969

Chytroeisphaeridia chytroeides (Sarjeant 1962) Downie and Sarjeant 

1965, emend. Davey 1970

Cerebropollenites macroverrucosus (Thiergart) Schulz 1967

Circulodinium distinctum (Deflandre and Cookson 1955) Jansonius 

1986

Circulodinium vermiculatum Stover and Helby, 1987

Classopollis torosus (Reissinger) Balme, 1957 

Cometodinium habibii Monteil, 1991

Cribroperidinium globatum (Gitmez and Sarjeant, 1972) Helenes, 

1984

Cribroperidinium sarjeantii (Vozzhennikova, 1967) Helenes, 1984

Ctenidodinium ornatum (Eisenack 1935) Deflandre 1938

Cyathidites minor Couper 1953

Cyclonephelium hystrix (Eisenack, 1958) Davey, 1978

Dapsilidinium multispinosum (Davey, 1974) Bujak et al., 1980

Densoisporites velatus Weyland and Krieger 1953

Dichadogonyaulax bensonii Monteil, 1992

Dingodinium tuberosum (Gitmez 1970) Fisher and Riley 1980

Dissiliodinium giganteum Feist-Burkhardt, 1990

Endoscrinium campanula (Gocht, 1959) Vozzhennikova, 1967

Endoscrinium pharo Duxbury 1977

Gleicheniidites senonicus Ross 1949

Glossodinium dimorphum Ioannides et al., 1977

Gochteodinia virgula Davey 1982b

Gonyaulacysta helicoidea (Eisenack and Cookson 1960)

Hystrichodinium pulchrum Deflandre, 1935

Kiokansium polypes (Cookson and Eisenack, 1962) Below, 1982

Micrhystridium stellatum Deflandre 1945

Neoraistrickia truncata (Cookson) Potonié 1956

Neuffenia willei 

Brenner and Dürr, 1986

Oligosphaeridium asterigerum (Gocht, 1959) Davey and Williams, 

1969

Oligosphaeridium patulum Riding and Thomas 1988

Oligosphaeridium pulcherrimum (Deflandre and Cookson, 1955) 

Davey and Williams, 1966

Pareodinia halosa (Filatoff, 1975) Prauss, 1989

Pareodinia robusta Wiggins, 1975

Prolixosphaeridium anasillum Erkmen and Sarjeant 1980

Prolixosphaeridium granulosum (Deflandre, 1937) Davey et al., 

1966

Prolixosphaeridium deirense  Davey et al., 1966

Prolixosphaeridium mixtispinosum (Klement, 1960) Davey et al., 

1969

Prolixosphaeridium sp. A Monteil, 1993

Pterospermella australiensis (Deflandre and Cookson 1955) 

Eisenack 1972

Pterospermella helios Sarjeant 1959

Spheripollenites subgranulatus Couper 1958

Stiphrosphaeridium dictyophorum (Cookson and Eisenack, 1958) 

Lentin and Williams, 1985

Systematophora areolata Klement 1960

Systematophora daveyi Riding and Thomas, 1988

Systematophora orbifera Klement, 1960

Systematophora silybum Davey, 1979

Tanyosphaeridium isocalamum (Deflandre and Cookson 1955) 

Davey and Williams 1969

Tehamadinium evittii (Dodekova, 1969) Jan du Chêne et al., 1986

Veryhachium irregulare de Jekhowsky 1961