background image

GEOLOGICA CARPATHICA

, JUNE 2018, 69, 3, 264–282

doi: 10.1515/geoca-2018-0016

www.geologicacarpathica.com

The Rupelian – Chattian transition in the north-western 

Transylvanian Basin (Romania) revealed by calcareous 

nannofossils: implications for biostratigraphy and 

palaeoenvironmental reconstruction

MĂDĂLINA – ELENA KALLANXHI 

1

, RAMONA BĂLC 

2, 3, 

,

 

STJEPAN ĆORIĆ 

4

,  

SZABOLCS – FLAVIUS SZÉKELY

 1

 and SORIN FILIPESCU 

1

1 

Babeș–Bolyai University, Department of Geology, M. Kogălniceanu 1, 400084 Cluj–Napoca, Romania; madalina_kallanxhi@yahoo.com, 

szekelyflavius@gmail.com, sorin.filipescu@ubbcluj.ro

2

 Babeș–Bolyai University, Department of Environmental Science, Fântânele 30, 400294 Cluj–Napoca, Romania

3 

Interdisciplinary Research Institute on Bio–Nano Sciences, Babeș–Bolyai University, 42 Treboniu Laurian Street, 400271 Cluj–Napoca, 

Romania; 

 

ramona.balc@ubbcluj.ro

4 

Geological Survey of Austria, Neulinggasse 38, A–1030 Vienna, Austria; Stjepan.Coric@geologie.ac.at

(Manuscript received November 13, 2017; accepted in revised form April 16, 2018)

Abstract: Sediments belonging to the Oligocene Vima Formation (located in the north-western part of the Transylvanian 

Basin,  Romania)  have  been  investigated  for  calcareous  nannofossils  content.  Biostratigraphically,  the  sedimentary 

 succession is late Rupelian–Chattian in age, belonging to the NP24 — Sphenolithus distentus and NP25 — Sphenolithus 

ciperoensis biozones, to CP19a — Cyclicargolithus floridanus and CP19b — Reticulofenestra bisecta Subzones and to 

the interval from CNO4 — Sphenolithus distentus / Sphenolithus predistentus CRZ to CNO5 — Sphenolithus ciperoensis 

TZ. The palaeoenvironment of the Fântânele section was reconstructed by means of calcareous nannofossils and statistics. 

Multivariate statistics were applied to the composition of autochthonous assemblages and the obtained clusters were used 

to assess the palaeoecological preferences of the nannofossils. We document changes from more stable open-marine 

 regime, with temperate sea-surface temperatures interfering locally with influx of cooler water and enriched cool-nutrient 

supply for the late Rupelian–earliest Chattian (NP24), to shallower and possibly warmer near-shore marine eutrophic 

environment, with salinity fluctuations, increased terrigenous material run-off and freshwater influx for the remaining 

early Chattian (NP25).

Keywords: Rupelian–Chattian transition, Central Paratethys, Transylvanian Basin, calcareous nannofossils, biostratigraphy, 

palaeoenvironment, statistics.

Introduction

The  Oligocene–Early  Miocene  interval  is  characterized  by 

 important palaeogeographical changes, due to intense tectonic 

activity,  uplifting  of  the  alpine  mountain  chains,  all  these 

bringing  the  reconfiguration  of  the  area  into  two  marine 

 domains:  the  intracontinental  Paratethys  to  the  north  and  

the Mediterranean to the south (Laskarev 1924; Báldi 1969, 

1980;  Rusu  1988;  Săndulescu  &  Micu  1989;  Rögl  1998, 

1999). Distinct marine conditions associated with the above 

mentioned changes are reflected in the composition of macro- 

and micro-palaeontological assemblages, by the appearance of 

Paratethyan endemic assemblages, immediately after the first 

isolation  of  the  Paratethys  in  the  Early  Oligocene  (early 

 Rupelian  or  early  Kiscellian  in  the  terms  of  Paratethyan 

 stages). Within the NP23 biozone, blooms of endemic species 

Pontosphaera fibula and of other taxa such as Reticulo fenestra 

ornata and Braarudosphaera bigelowii, are recorded all over 

the area (Gheţa et al. 1976; Krhovský et al. 1992; Haczewski 

1989;  Nagymarosy  &  Voronina  1992;  Rusu  et  al.  1996; 

 Nagymarosy  2000;  Schultz  et  al.  2004;  Melinte  2005; 

Melinte-Dobrinescu & Brustur 2008; Soták 2010; Oszczypko- 

Clowes  &  Żydek  2012),  reflecting  restricted  basin  palaeo-

environment  characterized  by  anoxic  conditions,  reduced 

 salinities  and  colder  surface  sea  waters.  All  these  environ-

mental  features  can  be  attributed  to  the  reduced  seaway 

 connection to the Mediterranean region (Rögl 1998, 1999).

The  Early  to  Late  Oligocene  interval  (late  Rupelian  to 

Chattian, or late Kiscellian to Egerian, in terms of Paratethyan 

stages), corresponding to the upper NP23 to NP25 biozones, is 

characterized by the re-establishment of normal marine con-

ditions  due  to  the  opening  of  the  sea-way  connection  with  

the Mediterranean Sea via the Slovenian corridor (Báldi 1986; 

Nagymarosy 1990; Rögl 1998, 1999; Popov et al. 2004). In 

the northern part of the basin a connection with the North Sea 

probably  existed  through  the  Rhine  Graben  (Berger  1996; 

Sissingh 1997; Rögl 1998, 1999; Popov et al. 2004), while to 

the south a well developed marine gateway through the eastern 

Mediterranean provided access from the Indo–Pacific realm 

(Rögl  &  Steininger  1983).  These  palaeogeographical  and 

background image

265

OLIGOCENE TRANSITION IN TRANSYLVANIAN BASIN REVEALED BY CALCAREOUS NANNOFOSSILS

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

palaeoclimatic  changes  during  the  Oligocene  (Kiscellian–

early Egerian), are also reflected in the composition of calca-

reous nannofossil assemblages, and well documented by many 

authors, from several areas of the Paratethyan domain. 

The aims of this study are: 1) to bring new contributions to 

the regional Oligocene biostratigraphy; 2) to investigate and 

record the calcareous nannofossil assemblages and bioevents, 

their  diversity  and  abundance  patterns;  3)  to  investigate  

the  palaeoecology  of  the  calcareous  nannofossils,  to  recon-

struct the palaeoenvironment based on the most abundant taxa 

and  to  compare  the  studied  deposits  to  other  localities  on  

the regional and global scales.

Geological setting

The Transylvanian Basin is a major sedimentary basin sur-

rounded by the Eastern and Southern Carpathians to the south 

and east, the Apuseni Mountains to the west and the Preluca–

Țicău metamorphic massifs to the north. From a stratigraphic 

point of view, the Transylvanian Basin comprises sedimentary 

sequences  extending  from  the  Late  Cretaceous  to  the  Late 

Miocene (Krézsek & Bally 2006). The Oligocene sediments 

from the north-western part of the Transylvanian Basin were 

deposited into three distinct sedimentation areas (Rusu 1970), 

all  named  after  the  neighbouring  crystalline  massifs,  which 

from the north-east to south-west are: the Preluca, the Meseş 

and the Gilău areas. The lateral extension of the formations 

from the Preluca area is lithologically uniform, in the Meseş 

and  Gilău  areas  the  lateral  variations  are  characteristic  

(Rusu 1977).

The investigated sediments (Fântânele section) are part of 

the  terrigenous  Vima  Formation  (Lăzărescu  1957,  emend. 

Rusu 1969), located south of the Preluca Massif, in the NW 

Transylvanian Basin (Fig. 1) and represent a continuous marine 

sedimentary  succession  spanning  the  Oligocene  to  Early 

Miocene  (Popescu  1975;  Mészáros  1991;  Krézsek  &  Bally 

2006;  Filipescu  2011).  Hofmann  (1887)  described  the  sedi-

ments from the north-western part of the Transylvanian Basin 

as “a deep water clay facies of Aquitanian age” with molluscs. 

Majzon  (1950)  mentioned  foraminifera  assemblages  from 

deposits  “similar  to  Kiscell  clays”.  Lăzărescu  (1957)  sug-

gested a Late Oligocene age for these sediments and similari-

ties to the boreal fauna. Mészáros & Marosi (1957) described 

molluscs from the “grey claystones and marlstones horizon”. 

Rusu (1969) included under the description of “Vima strata” 

all the sedimentary succession between the Ileanda Formation 

(of Rupelian age) and Hida Formation (of Early Miocene age). 

Rusu (1977) assigned the Vima Formation to the Egerian (late 

Rupelian–Chattian) in the Vima Syncline and to the Egerian– 

Eggenburgian  (late  Rupelian  to  Aquitanian)  in  the  Glod 

Anticline.  Additional  data  were  published  on  foraminifera 

(Popescu 1971, 1972, 1975; Popescu & Iva 1971; Popescu & 

Brotea 1989), molluscs (Rusu 1977), ostracods (Olteanu 1980, 

2002), and palinomorphs (Ionescu & Popescu 1995). Recent 

studies  on  the  Vima  Formation  (Fântânele  section)  were 

focussed  on  planktonic  and  benthic  foraminiferal  biostrati-

graphy and palaeoecology (Székely & Filipescu 2015, 2016).

Mészáros (1991) traced the Oligocene / Miocene boundary 

within the Fântânele section, and considered the age of the Vima 

Formation as Oligocene to Early Miocene. Previous studies on 

Oligocene calcareous nannofossils from the NW Transylvanian 

Basin were done by: Popescu & Gheţa (1972), Mészáros et al. 

(1973, 1979), Martini & Moisescu (1974), Mészáros & Ghergari 

(1979), Mészáros (1984, 1991), Mészáros & Ianoliu (1989). 

Melinte-Dobrinescu & Brustur (2008) traced the Oligocene/

Miocene boundary in the Vima Formation based on the first 

occurrence (FO) of Sphenolithus capricornutus.

Material and methods

Studied sections

The  sampled  outcrops  consist  of  claystones,  marlstones, 

siltstones, and thin sandstone intercalations. In all, 75 samples 

were collected from three outcrops (47.41477º N, 23.82699º E; 

47.41356º  N,  23.82637º  E  and  47.41195º  N,  23.82692º  E)  

of the Fântânele section (Fig. 1; Székely & Filipescu 2016),  

in  order  to  analyse  the  calcareous  nannofossil  assemblages.  

The  studied  outcrops  are  labelled  A,  B  and  C,  where  the 

Transect A represents the oldest one and Transect C the youn-

gest. Transect A represents a thick sequence (16 m thickness) 

of finely laminated silty claystones and marlstones, siltstones 

with  thin  intercalations  of  clayey  fine  grained  sandstones.  

In  the  uppermost  part  compact  coarse  grained  sandstone  is 

present. The sampling resolution for Transect A is at intervals 

of 0.50 m. Transect B has an approximate thickness of 3 m and 

is mainly composed by fine laminated marly siltstones. Four 

samples were collected at a resolution of 0.50 m. Transect C 

has an approximate thickness of 7.5 m, and is lithologically 

composed of silty claystones and marlstones, intercalated with 

clayey siltstones and sandstones. High resolution sampling at 

intervals of 10–30 cm was applied.

Investigation methods

Smear slides, for all samples, were prepared using the stan-

dard smear slide technique (Bown & Young 1998) and were 

examined under the light microscope at 1000× magnification, 

in  polarized  light.  Quantitative  data  were  obtained  from  34 

samples by counting at least 300 specimens per sample (Bown 

& Young 1998), while for less abundant samples (20 samples) 

at least 100 specimens were counted. Due to the low calca-

reous nannofossil abundance, only qualitative investigations 

were  done  on  8  samples  (FA1,  FA4,  FA9,  FA29,  FA36,  

FB10,  FB25  and  FB55)  which  have  a  very  low  amount  of 

 calcareous nannofossils, while 12 samples are barren in cal-

careous  nannofossils (FB1, FB4, FB28, FB31, FB34, FB37, 

FB40,  FB58,  FB61,  FB64,  FB66  and  FB70).  The  overall 

abundance of calcareous nannofossils per field of view (FOV) 

in  each  sample  was  assessed  as  follows:  A  —  abundant  

background image

266

KALLANXHI , BĂLC , ĆORIĆ, SZÉKELY and FILIPESCU

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

Fig. 1. a — Geological map of Rohia–Fântânele area 1 : 200,000 (redrawn after Giuşcă & Rădulescu 1967); b — Palaeogeographical map 

(Popov et al. 2004).

background image

267

OLIGOCENE TRANSITION IN TRANSYLVANIAN BASIN REVEALED BY CALCAREOUS NANNOFOSSILS

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

(>21 specimens per FOV), C — common (11–20 specimens 

per  FOV),  F  —  few  (1–10  specimens  per  FOV),  R  —  rare 

(1–10 nannofossils per 10 FOV), VR — very rare (1 specimen 

in >10 FOV), B — barren (no nannofossils were found) and 

“Bloom”  when  >90 %  of  the  assemblage  is  represented  by 

a single species/group.

Preservation  was  considered  as  follows:  G  —  good  (all  

the specimens can be identified at species level and less than 

10 % of the assemblage shows fragmentation, etching and/or 

overgrown),  M  —  moderate  (25 %  of  the  specimens  show 

fragmentation,  etching  and  overgrowth,  but  the  species  are 

easily to identify) and P — poor (>25 % of the specimens are 

broken,  sometimes  it  was  not  possible  to  identify  some 

 fragments;  the  exceptions  were  the  single  segments  of 

Braarudosphaera bigelowii  and  fragments  of  Pontosphaera 

spp.).  The  standard  zonations  (Fig.  2)  implemented  in  this 

study follow the concepts of Martini (1971), Okada & Bukry 

(1980)  and  additionally,  tentative  correlation  is  made  to  

the low to middle latitudes zonation of Agnini et al. (2014). 

The PAST software (Hammer et al. 2001) was used for statis-

tical treatment of the counts. Multivariate Hierarchical Clus-

tering  by Ward’s  Method  and  Non-metric  Multidimensional 

Scaling  (Hammer  &  Harper  2006)  have  been  applied  to  all  

the counted samples. Before statistical treatment, percentages 

of the counts were calculated and the Arcsine SQRT (Square 

Root) formula was applied on the obtained data. The general 

taxonomy  follows  the  concepts  of  Perch-Nielsen  (1985a, b) 

and the Nannotax3 website (Young et al. 2017).

Results

Assemblage composition and species diversity

Forty-nine  calcareous  nannofossil  species  (Table 1,  electr. 

sup plement) were identified in the studied outcrops, 38 of them 

Fig. 2. Biochronological Time Scale for the Oligocene and the Central Paratethys regional stages (Gradstein et al. 2012). The standard calca-

reous nannofossils follow: NP — Martini (1971); CP — Okada & Bukry (1980); CNO — Agnini et al. (2014).

background image

268

KALLANXHI , BĂLC , ĆORIĆ, SZÉKELY and FILIPESCU

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

were in situ while 11 species were reworked from Mesozoic 

and lower stages of the Palaeogene. The long ranging species 

such  as  Braarudosphaera bigelowii,  Coccolithus pelagicus

Sphenolithus moriformis and Zygrhablithus bijugatus are con-

sidered the autochthonous component. The examined material 

contains well to poorly preserved calcareous nannofossil assem-

blages, dominated in order of abundance by: Cyclicargolithus 

floridanusReticulofenestra minuta, Braarudosphaera bigelowii

Pontosphaera multipora,  Coccolithus pelagicus,  Reticulo­

fenestra gr. 3–5 µm, Reticulofenestra bisectaCyclicargolithus 

abisectus, Reticulofenestra lockeri,  Pontosphaera pygmaea, 

Reticulofenestra daviesii, Reticulofenestra stavensis, Helico­

sphaera recta,  Sphenolithus moriformis and Pontosphaera 

desueta.  Species  with  rarer  and  irregular  distribution  are: 

Coronocyclus  sp.,  Helicosphaera euphratis, H. intermedia, 

Pontosphaera cf. enormisPyrocyclus orangensisReticulo­

fenestra callida, R. dictyoda, R. scrippsae,  Sphenolithus 

akropodus, S. ciperoensisS. distentusSphenolithus predis­

tentus, Sphenolithus  sp.  and  Zygrhablithus bijugatus. Other 

important  biostratigraphical  species  such  as  Chiasmolithus 

altusSphenolithus dissimilis and Triquetrorhabdulus longus 

are  extremely  rare  and  appear  in  few  samples.  Reworked  

taxa  represent  0.2  %  of  the  whole  assemblage  and  include 

 species  (Table 1,  electr.  sup plement)  with  their  FO  (first 

occurrence)  and  LO  (last  occurrence)  in  the  Mesozoic  and 

lower stages of the Palaeogene.

The taxa diversity is expressed as the number of autochtho-

nous species per sample and here it is considered as moderate 

to low. The maximum diversity of 26 autochthonous species 

was recorded in sample FA20, in the first outcrop, decreasing 

in  the  second  one  up  to  a  maximum  of  17  autochthonous 

 species in sample FA34, while in the last one the maximum 

diversity of 22 species is recorded in samples FB19 and FB43. 

A  drastic  decrease  in  the  number  of  species  (5  species)  is 

recorded in the upper part of the last transect in the samples 

containing blooms of Braarudosphaera bigelowii and Reticulo ­

fenestra minuta. Microphotographs of the most representative 

nannofossil taxa are included in Figs. 3 & 4.

Calcareous nannofossils biostratigraphy

Biostratigraphically,  the  calcareous  nannofossil  assem-

blages  suggest  a  late  Rupelian  to  Chattian  age  (Fig.  2)  for  

the  whole  sedimentary  succession.  This  attribution  is  sup-

ported by the absence of index species Reticulofenestra umbi­

licus,  ranging  from  the  base  of  NP16  (Middle  Eocene)  to  

the lower NP23 (Gradstein et al. 2012). The lowermost part of 

the  Fântânele  section  (Transect A  and  partially  Transect  B) 

belongs to the NP24 — Sphenolithus distentus biozone (Martini 

1971)  and  CP19a  —  Cyclicargolithus floridanus  Subzone 

(Okada & Bukry 1980) of late Rupelian–early Chattian age. 

The  boundary  between  NP24  (Sphenolithus distentus Zone) 

—  NP25  (Sphenolithus ciperoensis  Zone  of  Chattian  age) 

 biozones  is  tentatively  traced  between  samples  FA34–FA35 

from  the  second  transect,  where  the  LO  of  Sphenolithus 

 distentus, was recorded. Above this level the presence of this 

marker is not observed anymore. The upper part of the second 

transect and the whole of Transect C belong to the NP25 — 

Sphenolithus ciperoensis biozone  of  Martini  (1971)  and  to 

CP19b  —  Reticulofenestra bisecta Subzone  of  Okada  & 

Bukry (1980). Correlation with the new zonation for low to 

middle latitudes, proposed by Agnini et al. (2014) suggest that 

the investigated transects would fall within the interval from 

CNO4  —  Sphenolithus  distentus / Sphenolithus  predistentus 

CRZ to CNO5 — Sphenolithus ciperoensis TZ.

The Upper Oligocene–Lower Miocene markers Sphenolithus 

delphix and Sphenolithus capricornutus,  used  to  define  

the  Oligocene/Miocene  boundary  in  the  Mediterranean  area 

and other Lower Miocene taxa such as Helicosphaera carteri, 

H. mediterranea and Discoaster druggii were not recorded in 

the investigated samples.

Abundance patterns of the selected coccolith taxa for 

 palaeoecology

The  palaeoecological  preferences  (Table 2,  electr.  sup-

plement) of the most abundant species and taxonomical groups 

were  investigated  and  the  following  were  considered  for 

palaeo environmental  reconstruction: Cyclicargolithus spp. 

(Cy.  flori danus with an average of 26.06 %and Cyabisectus 

with a total of 3.42 %), small reticulofenestrids (Reticulofenestra 

minuta  comprise  coccoliths  < 3 µm;  14.78 %  from  total; 

Reticulofenestra gr. 3–5 µm including small specimens with 

a pore or a small central opening — total of 4.26 %), Ponto­

sphaera spp. (14.55 %), Braarudosphaera bigelowii (12.70 %), 

Reticulofenestra spp. (coccoliths > 5 µm; 11.57 % from total), 

Coccolithus pelagicus (7.44 %), Sphenolithus  spp.  (2.54 %) 

and Helicosphaera spp. (1.54 %). The abundance patterns of 

the  above  mentioned  species  and  groups  are  plotted  along  

the sampling interval (m) in Figs. 5, 6 and 7.

Multivariate statistics

The Multivariate Hierarchical Clustering (Fig. 8) indicates 

four main clusters and eight sub-clusters which are well diffe-

rentiated  and  are  described  below.  Samples  belonging  to  

the first and second outcrops are noted with FA and samples 

belonging to the third outcrop with FB.

Cluster 1 (assemblages with Pontosphaera spp.) comprises 

9 samples and groups the highest proportions of Pontosphaera 

spp. with values between 13.21 and 99.34 %. Two sub-clusters 

1a and 1b are differentiated by the fluctuations in the amount 

of  Pontosphaera  spp.  Sub-cluster  1a  (samples  FA3,  FA10, 

FA23,  FA24,  FB12  and  FB41)  includes  assemblages  with 

Pontosphaera spp. in association with increased amounts of 

C. pelagicus (from 12.38 to 61.32 %) and in two samples with 

Helicosphaera spp. (up to 25.23 %). The average participation 

of the rest of the taxa is less than 6 % per group. Sub-cluster 1b 

(samples FB9, FB11 and FB13) is characterized by the highest 

amount of Pontosphaera spp. (from 81.41 to 99.34 %).

Cluster II (Cyclicargolithus spp. assemblages) concentrates 

the  highest  number  of  samples  (in  total  28)  belonging  to 

background image

269

OLIGOCENE TRANSITION IN TRANSYLVANIAN BASIN REVEALED BY CALCAREOUS NANNOFOSSILS

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

Fig. 3. Calcareous nannofossils from the Vima Formation. The microphotographs are taken under Cross-Polarized Light (XPL) and Bright 

Field (BF). 1–2 — Coccolithus pelagicus (same specimen, XPL and BF, sample FA20); 3 — Reticulofenestra stavensis (XPL, sample FA18); 

4 — Reticulofenestra bisecta (XPL, sample FA21); 5 — Reticulofenestra bisecta (XPL, sample FA32); 6 — a) Reticulofenestra daviesii; b) 

Coccolithus pelagicus; c) Reticulofenestra bisecta (XPL, sample FB20); 7 — Reticulofenestra lockeri (XPL, sample FB67); 8 — Reticulofenestra 

lockeri  (XPL,  sample  FA28);  9  —  Pyrocyclus orangensis  (XPL,  sample  FA11);  10  —  Cyclicargolithus abisectus  (XPL,  sample  FA35);  

11 — Cyclicargolithus floridanus (XPL, sample FA18); 12 — Cyclicargolithus floridanus (XPL, sample FB43); 13 — Reticulofenestra lockeri 

(XPL,  sample  FA32);  14  —  a)  Pontosphaera multipora;  b)  Reticulofenestra bisecta;  c)  Reticulofenestra minuta  (XPL,  sample  FA20);  

15  —  a) Cyclicargolithus abisectus;  b) Cyclicargolithus floridanus  (XPL,  sample FA28);  16  — Reticulofenestra stavensis (XPL,  sample 

FA20); 17 — Reticulofenestra callida (XPL, sample FA7); 18 — Reticulofenestra daviesii (XPL, sample FB43); 19 — Reticulofenestra daviesii 

(XPL, sample FA13); 20 — a) Helicosphaera recta; b) Reticulofenestra callida (XPL, sample FB19); 21 — Reticulofenestra callida (XPL, 

sample FA32); 22 — Reticulofenestra gr. 3–5 μm (XPL, sample FA20); 23 — Reticulofenestra gr. 3–5 μm (XPL, sample FA20).

background image

270

KALLANXHI , BĂLC , ĆORIĆ, SZÉKELY and FILIPESCU

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

Fig. 4. Calcareous nannofossils from the Vima Formation. The microphotographs are taken under Cross-Polarized Light (XPL) and Bright 

Field (BF). — Braarudosphaera bigelowii (XPL, sample FB73); 2 — Braarudosphaera bigelowii (XPL, sample FB73); 3–4 — Helicosphaera 

euphratis (same specimen, XPL and BF, sample FA15); 5 — Helicosphaera euphratis (XPL, sample FA20); 6 — Helicosphaera recta (XPL, 

sample FA21); 7 — Pontosphaera multipora (XPL, sample FA18); 8 — Pontosphaera pygmaea (XPL, sample FA3); 9 – Helicosphaera  

intermedia (XPL, sample FA20); 10 — Pontosphaera cf. enormis (XPL, sample FA14); 11  Pontosphaera pygmaea (XPL, sample FB43);  

12 — Pontosphaera desueta (XPL, sample FB16); 13 — Pontosphaera multipora (XPL, sample FB13); 14a–b — Sphenolithus distentus 

(same specimen in two orientations, XPL, sample FA17); 15a–b — Sphenolithus distentus (same specimen in two orientations, XPL, sample 

FA11); 16a–b — Sphenolithus akropodus (same specimen in two orientations, XPL, sample FA17); 17a–b — Sphenolithus dissimilis (same 

specimen in two orientations, XPL, sample FB46); 18 — Sphenolithus moriformis (XPL, sample FA28); 19 — Sphenolithus ciperoensis (XPL, 

sample FA18); 19a–b — Sphenolithus predistentus (same specimen in two orientations, XPL, sample FA17); 21 — Sphenolithus predistentus 

(XPL, sample FA11); 22–23 — Chiasmolithus altus (same specimen, XPL and BF, sample FA30); 24 — Zygrhablithus bijugatus (XPL, sample 

FA13); 25 — Thoracosphaera sp. (XPL, sample FB67).

background image

271

OLIGOCENE TRANSITION IN TRANSYLVANIAN BASIN REVEALED BY CALCAREOUS NANNOFOSSILS

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

Transect A (FA5–FA8, FA11, FA15–FA19, FA26, FA30–FA32), 

all  positive  samples  from  the  second  (FA33  to  FA35)  and 

some  from  the  third  outcrop  (FB7–FB8,  FB16,  FB19,  

FB22–FB24,  FB42,  FB46,  FB49,  FB52).  It  contains  

the highest amount of Cyclicargolithus spp. (Cy. floridanus), 

which  has  an  average  participation  in  the  assemblage  of 

47.64 %  (from  0.31  up  to  73.29 %),  followed  in  moderate 

amounts  by Reticulofenestra spp.  (17.68 %)  and  by  small 

reticulofenestrids (16.29 %). Low participation in the assem-

blage was registered for C. pelagicus (7.58 %) and for Ponto­

sphaera  spp.  (6.1 %). Very  low  average  quantities  occur  of 

Sphenolithus spp. (2.9 %), Helicosphaera spp. (1.74 %) and 

B. bigelowii (0.69 %). The three sub-clusters identified (2a, 2b 

and  2c)  are  defined  by  the  fluctuations  in  abundance  and 

intra-cluster shifts of the main autochthonous taxa. Sub-cluster 

2a  exhibits  the  lowest  amounts  of  Cy. floridanus (32.44 %) 

and the highest amount of small reticulofenestrids (24.70 %), 

 followed  by  Reticulofenestra  spp.  (17.35 %),  C. pelagicus 

(11.99 %), less Pontosphaera spp. (6.47 %) and Sphenolithus 

spp.  (6.43 %).  Increasing  of  the  amount  of  Cy. floridanus 

(average  48.25 %)  and  shift  in  small  reticulofenestrids 

(decrease to 17.84 %) and Reticulofenestra spp. (increase to 

22.84 %) is noticed in sub-cluster 2b, coupled with a very low 

amount of the rest of the taxa with group average participation 

less than 4 %. Sub-cluster 2c exhibits the highest quantity of 

Cy. floridanus  (58.96 %),  slightly  increase  of  C. pelagicus 

(11.63 %)  and  Pontosphaera  spp.  (10.35 %)  and  noticeable 

decrease of Reticulofenestra spp. (8.91 %) and small reticulo-

fenestrids (7.61 %).

Cluster  III  (small  reticulofenestrids  assemblages)  has  13 

samples belonging to Transect A and to Transect C and dis-

plays  the  highest  amounts  of  small  reticulofenestrids  which 

account for an average of 47.69 %, followed by Cyclicargolithus 

spp. (Cy. floridanus) with a mean of 21.23 %, Reticulo fenestra 

spp. (10.72 %), B. bigelowii (9.31 %), C. pelagicus (6.24 %), 

Pontosphaera spp. (5.46 %), Sphenolithus spp. (2.06 %) and 

Helicosphaera spp. (1.92 %). Three sub-clusters (3a, 3b and 

3c)  were  distinguished  based  on  the  participation  of  small 

reticulofenestrids  to  the  assemblages,  with  gradual  increase 

from sub-cluster 3a to 3c. Sub-cluster 3a (FA4, FA12–FA14, 

FA22)  is  dominated  by  an  association  of  small  reticulo-

fenestrids  (36.84 %)  and  Cy. floridanus  (33.18 %),  with 

an additional contribution of B. bigelowii (12.60 %) and less 

Reticulofenestra  spp.  (7.87 %),  Pontosphaera  spp.  (7.23 %) 

and C. pelagicus (6.90 %). Sub-cluster 3b (FA20-FA21, FA25, 

FA27–FA28  and  FB43)  exhibits  abundant  small  reticulo-

fenestrids (53.26 %), with smaller numbers of Cy. floridanus 

(17.97 %), Reticulofenestra spp. (13.66 %) and C. pelagicus 

(7.55 %). The rest of the taxa do not reach more than 4.5 % per 

group.  Sub-cluster  3c  (FB67–FB68)  displays  the  highest 

amount of small reticulofenestrids (58.11 %) and additionally 

B. bigelowii (26.13 %).

Cluster IV includes only 4 samples (FB69, FB71–FB73) 

from  the  uppermost  part  of  Transect  C.  It  is  clearly  distin-

guished from the others due to the blooms of a single species 

Braarudosphaera bigelowii (from 91.88 to 96.33 %).

Discussions

Biostratigraphy and calcareous nannofossil bioevents

The sediments from the Vima Formation were previously 

investigated  by  Mészáros  &  Ghergari  (1979)  and  Mészáros 

(1984), who identified the following zones: the NP24 biozone 

based  on  the  co-occurrence  of  Cyclicargolithus floridanus, 

Reticulofenestra dictyoda, Sphenolithus moriformis, Ponto­

sphaera fibula, and Reticulofenestra ornata; the NP25 biozone 

with  dominant  species:  Cyclicargolithus floridanus, Cocco­

lithus formosus, Coccolithus pelagicus, Sphenolithus cipe­

roensis, Cyclicargolithus abisectus, Sphenolithus moriformis, 

Pontosphaera desueta, P. multipora, P. obliquipons, P. fibula, 

Syracosphaera clathrata and R. ornata;  the  NN1  biozone 

based on the presence of marker species Triquetrorhabdulus 

carinatus, and the NN2 biozone based on the sporadic appea-

rance  of  index  species  Discoaster druggii, Helicosphaera 

ampliaperta,  H.  cf. carteri, H. euphratis, R. lockeri and  

R. pseudoumbilica. 

The  assignments  of  the  Fântânele  section  deposits  to  

the NP24–NP25 biozones (Martini 1971), to CP19 (Okada & 

Bukry 1980) and additionally to CNO4–CNO5 (Agnini et al. 

2014)  are  based  on  the  presence  of  several  primary  and 

 secondary  bioevents  considered  for  the  Oligocene  biostrati-

graphical  subdivision  schemes. Whether  or  not  they  can  be 

applied in the present study is discussed below. Several authors 

(Mészáros  1984;  Rusu  et  al.  1996;  Melinte  2005;  Melinte-

Dobrinescu  &  Brustur  2008)  investigated  various  locations 

where the Vima Fm. crops out, in more complete successions 

compared to the Fântânele section. A recent study on plank-

tonic  and  benthic  foraminifera  from  the  Vima  Formation 

(Székely  &  Filipescu  2016)  indicates  an  Early  Oligocene 

(Rupelian) age for the base of the first sampled transect, more 

precisely  the  Biozone  O4  (based  on  the  co-occurrence  of 

Chiloguembelina cubensis together  with  Paragloborotalia 

opima),  while  for  the  third  investigated  transect  a  Late 

Oligocene  (Chattian)  age  is  suggested,  or  the  foraminiferal 

biozone  O5  (based  on  co-occurrence  of  Paragloborotalia 

opima and Globigerina ciperoensis).

In the Fântânele section, the marker species Sphenolithus 

ciperoensis  appears  in  the  Transect  A  at  7 m  (FA15).  

The absence of this species from the lower part of the studied 

section raises the question whether the NP23 zone of Martini 

(1971) and CP18 of Okada & Bukry (1980) are present or not. 

The presence of the NP23 and CP18–lower CP19a biozones 

would  be  in  disagreement  with  the  planktonic  foraminifera 

data (Székely & Filipescu 2016) which point to the O4 zone of 

Wade et al. (2011) of late Rupelian age. In conclusion, it is 

difficult  to  consider  this  event  as  a  first  occurrence  and  its 

absence from the lowermost part of Transect A might be due to 

unfavourable environmental conditions or to its scarcity and in 

general to the reduced number of sphenoliths.

The species Cyclicargolithus abisectus displays low abun-

dance patterns, both sizes being present (<10 μm and >10 μm). 

The medium-sized specimens (<10 μm) appear from samples 

background image

272

KALLANXHI , BĂLC , ĆORIĆ, SZÉKELY and FILIPESCU

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

Fig. 

5. 

Transect 

A

 — 

lithology

, sample 

positions 

and 

abundance 

patterns 

of 

the 

most 

important 

species 

and 

taxonomic 

groups 

plotted 

along 

the 

sampling 

interval 

(m): 

a 

— 

Standard 

Zonations 

 

of 

Martin

i (1971), 

Okada 

Bukry 

(1980) 

and 

Agnini 

et 

al. 

(2014); 

b 

— 

Lithology; 

c 

— 

Samples 

position; 

d 

— 

Braarudosphaera 

bigelowii

e

 — 

Coccolithus pelagicus

f

 — 

Cyclicar

golithus 

 floridanus 

+ Cyclicar

golithus 

abisectus

g 

— 

Helicosphaera

 spp.; 

h 

— 

Pontosphaera

 spp.; 

i 

— 

Reticulofenestra

 gr

3–5 + 

Reticulofenestra

 minuta

j 

— 

Reticulofenestra

 spp. 

>5; 

 

k — 

Sphenolithus

 spp.

background image

273

OLIGOCENE TRANSITION IN TRANSYLVANIAN BASIN REVEALED BY CALCAREOUS NANNOFOSSILS

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

FA3 upwards and are more continuously 

distributed  along  the  section  than  the 

large- sized  ones  which  are  present  star-

ting  from  the  middle  of  Transect A  

(FA17), in a few samples above this level. 

In this study the FO is not recognized due 

to the fact that the above mentioned spe-

cies  has  a  continuous  distribution  along 

the  investigated  section.  Rich  assem-

blages,  dominated  by  Cy. abisectus and 

R. bisecta,  are  mentioned  for  the  late 

Rupelian (Van Simaeys et al. 2004), from 

several  boreholes  in  the  Belgium  Basin 

(Belgium and Germany). From the Central 

Paratethys  realm,  the  NP24  zone  and 

assemblages  containing  this  taxon  were 

men tioned  from:  the  Magura  Basin 

(Poland)  by  Oszczypko-Clowes  (2001, 

2010),  Oszczypko-Clowes  &  Ślączka 

(2006),  Oszczypko-Clowes  &  Żydek 

(2012), the Subtatric Group (Slovakia) by 

Ozdínová  (2013),  the  Podhale  flysch 

(Poland)  by  Garecka  (2005),  from  the 

Skole Unit (Poland) by Garecka (2012), 

from  the  Magura  Basin  (Poland)  by 

Kopciowski & Garecka (1996), Garecka 

et  al.  (1998),  Garecka  &  Szydlo  (2011, 

2015),  from  the  South  Slovakian  Basin 

by  Ozdínová  &  Soták  (2014),  from  the 

NW  Transylvanian  Basin  and  from  the 

central and southern Eastern Carpathians 

(Gheţa et al. 1976; Mészáros & Ghergari 

1979; Mészáros 1991; Rusu et al. 1996; 

Melinte  2005;  Melinte-Dobrinescu  & 

Brustur 2008).

The species Sphenolithus distentus is 

very scarce in the first two transects, and 

is absent from the third one. Its LO is ten-

tatively  placed  at  the  level  of  sample 

FA34 in Transect B.

The LO of Sphenolithus predistentus 

is  not  used  in  the  standard  zonations  of 

Martini  (1971)  and  Okada  &  Bukry 

(1980),  but  its  biostratigraphical  impor-

tance was pointed out by several authors 

(Fornaciari et. al. 1990; Olafsson & Villa 

1992; Agnini et. al. 2014). Gradstein et al 

(2012) indicate that its LO is located at 

26.93 Ma, below the LO of Sphenolithus 

distentus.  This  bioevent  is  recorded  in  

the Fântânele section at 13.5m (between 

FA28–FA29) from Transect A. Its absence 

from Transects B and C makes it suitable 

to be considered as a possible LO event.

The  species  Helicosphaera recta  is 

more  or  less  continuously  present  in 

Fig. 

6.

 T

ransect 

— 

lithology

, sample 

positions 

and 

abundance 

patterns 

of 

the 

most 

important 

species 

and 

taxonomic 

groups 

plotted 

along 

the 

sampling 

interval 

(m): 

a 

— 

Standard 

Zonations 

of 

Martini 

(1971), 

Okada 

Bukry 

(1980) 

and 

Agnini 

et 

al. 

(2014); 

b 

— 

Litho

logy; 

c 

— 

Sample 

positions; 

d 

— 

Coccolithus 

pelagicus

e

 — 

Cyclicar

golithus 

floridanus 

+ Cyclicar

golithus 

abisectus

;  

f — 

Helicosphaera

 spp.; 

g — 

Pontosphaera

 spp.; 

h — 

Reticulofenestra

 gr

. 3–5 + 

Reticulofenestra minuta

i

 — 

Reticulofenestra

 spp. >5; 

j — 

Sphenolithus

 spp.

background image

274

KALLANXHI , BĂLC , ĆORIĆ, SZÉKELY and FILIPESCU

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

Transects A and B (from sample FA5 of the first 

outcrop, upwards), and sporadically in Transect 

C and due to this continuity its FO was not traced 

in  this  interval.  In  other  areas  of  the  Central 

Paratethys domain, this species has been mentio-

ned from the NP24–NP25 zones by Mărunţeanu 

(1992;  from  the  Romanian  Carpathians), 

Oszczypko-Clowes  (2001,  2010),  Garecka 

(2005),  Garecka  &  Szydlo  (2011,  2015),  and 

Ozdínová & Soták (2014). 

Pontosphaera  cf.  enormis  (first  observed  in 

sample FA7 from Transect A) occurs rarely and 

discontinuously.  It  appears  to  have  a  lower 

occurrence  (within  NP24)  compared  to  other 

studies  which  mention  it  near  the  NP24/NP25 

boundary (von Benedek & Müller 1974; Martini 

&  Müller  1975;  Martini  1981)  and  from  the 

NP25 Zone (Van Simaeys et al. 2004; Garecka 

2005;  Melinte  2005;  Melinte-Dobrinescu  & 

Brustur 2008; Ozdínová & Soták 2014).

The species Chiasmolithus altus is very rare 

and sporadic and is present only in Transect A 

 (samples  FA20  and  FA30).  Previous  reports 

from similar sections in Romania, mentioned its 

FO in the late Rupelian (Melinte-Dobrinescu & 

Brustur 2008).

The  species  Triquetrorhabdulus longus  has 

a  biostratigraphical  range  from  NP24  to  NN3 

Zones,  and  a  well  marked  acme  in  the  Late 

Oligocene (Blaj & Young 2010). It is present in 

the  studied  material  in  only  one  sample  from  

the third outcrop (FB43).

Rupelian / Chattian boundary

The  historically  acknowledged  Rupelian– 

Chattian  boundary  as  defined  from  its  typical 

stratotypes in the North Sea Basin, is associated 

with several benthic foraminiferal and dinocists 

events  (Köthe  1990;  Berggren  et  al.  1995;  

De  Man  et  al.  2004; Van  Simaeys  et  al.  2004, 

2005a, b;  Pross  et  al.  2010; Wade  et  al.  2011). 

New  data  on  the  reliability  of  marker  species 

foraminifer  Chiloguembelina cubensis  as  bio-

event  for  defining  the  R/C  boundary  were 

brought by King & Wade (2017). The base of the 

Chattian at the Monte Cagnero section (Umbria-

Marche Basin, Apennines, Italy) was calibrated 

at  27.82  Ma  at  the  HCO  (Highest  Common 

Occur rence)  of  Chiloguembelina cubensis 

(Coccioni  et  al.  2017).  In  terms  of  calcareous 

nannofossils  the  Rupelian–Chattian  boundary 

falls within the upper part of the NP24 biozone 

(Berggren  et  al.  1995;  Coccioni  et  al.  2008, 

2017). The R/C boundary in the North Sea Basin 

(Van Simaeys et al. 2004) is marked by cooler 

Fig. 

7.

 T

ransect 

– 

lithology

, sample 

positions 

and 

abundance 

patterns 

of 

the 

most 

important 

species 

and 

taxonomic 

groups 

plotted 

along 

the 

sampling 

interval 

(m): 

a 

— 

Standard 

Zonations 

of 

Martini 

(1971), 

Okada 

Bukry 

(1980) 

and 

Agnini 

et 

al. 

(2014); 

b 

— 

Lithology; 

c — 

Sample 

positions; 

d —

 Braarudosphaera bigelowii

e

 —

 Coccolith

us pelagicus

f

 —

 Cyclicar

golithus 

floridanus

 

+ Cyclicar

golithus abisectus

g

 — 

Helicosphaera

 spp.; 

h — 

Pontosphaera

 spp.; 

i — 

Reticulofenestra

 gr

. 3–5 + 

Reticulofenestra minuta

j

 — 

Reticulofenestra

 spp. >5; 

k — 

Sphenolithus

 spp.

background image

275

OLIGOCENE TRANSITION IN TRANSYLVANIAN BASIN REVEALED BY CALCAREOUS NANNOFOSSILS

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

climate and more open marine conditions for the late Rupelian, 

while the lower Chattian is associated with shallower, warmer 

climate  and  warmer  sea-surface  water  temperatures  and 

hyposaline shallow marine environments, as documented also 

by  the  calcareous  nannofossil  assemblages  (at  the  base  of 

Chattian) with presence in higher quantities of Ponstosphaera 

spp.,  Zygrhablithus bijugatus and  B. bigelowii.  Generally,  

the  calcareous  nannofossil  assemblages  from  the  Fântânele 

section, assigned to the NP24 / CP19a zones are comparable in 

species  composition  to  many  other  Paratethyan  localities, 

where the NP24 Biozone was identified, being considered as 

late  Rupelian  to  Chattian.  The  acknowledgement  of  NP24 /

CP19a is associated with the presence of several primary and 

secondary index species with overlapping ranges which cross 

the R/C boundary, such as Sphenolithus ciperoensisS. distentus

S. predistentusH. recta and Cy. abisectus. The identification 

of  the  NP25 / CP19b  biozones  (of  Chattian  age)  is  given  by  

the absence of S. distentus and S. predistentus in the last part 

of the second transect and in the third one. The R/C boundary 

is difficult to trace in the investigated sediments, and this is 

mainly due to the gaps between the outcrops, areas covered by 

vegetation,  where  sampling  was  not  possible.  Detailed  age 

assignment and separation of the nannofossil assemblages, to 

only late Rupelian or to the Chattian part of the NP24 biozone, 

was  also  difficult  to  perform  due  to  the  similarities  in  their 

composition.  The  first  investigated  transect  and  to  the  half  

of  the  second  one,  is  given  a  general  late  Rupelian–early 

Chattian  age  (NP24  Zone),  while  for  the  second  half  of 

Transect  B  and  Transect  C,  the  Chattian  age  was  assumed 

(NP25 Zone).

Calcareous nannofossils palaeoecology, palaeoenvironment 

and statistical interpretation

Palaeoenvironmental changes during the deposition of the 

Fântânele sedimentary succession are recorded here through 

the variations in calcareous nannofossil abundance and assem-

blage  composition,  all  together  connected  to  the  distinct 

 climatic  conditions  and  to  the  changed  palaeogeographical 

configuration during the Oligocene (Rögl 1998, 1999; Popov 

et  al.  2004).  The  calcareous  nannofossil  assemblages  from  

the  Fântânele  section  indicate  similar  palaeoenvironmental 

conditions  as  recorded  by  many  other  authors  in  other 

Paratethyan  areas,  with  a  temperate  to  cooler  late  Rupelian 

interval and slightly warmer conditions in the Chattian (Báldi-

Beke  1984;  Rögl  1998;  Soták  2010).  Similar  variations  in 

temperatures and salinities were mentioned by Van Simaeys et 

al. (2004) as prevailing during the early Chattian in the North 

Sea Basin, assumed to be connected to the beginning of the 

Late Oligocene Warming Event (Zachos et al. 2001).

Based  on  our  statistical  model  (Fig.  9)  and  calcareous 

 nanno fossil trophic preferences (Table 2, electr. sup plement),  

the  palaeoenvironmental  regime  under  which  the  Fântânele 

section sediments were deposited, can be considered as more 

open-marine  for  the  latest  Rupelian  to  earliest  Chattian 

 interval, with normal salinity, with little or no fluctuations in 

the nutrient supply content, and temperate to cool sea-surface 

temperatures, while for the youngest part of the section (NP25, 

early Chattian) this study confirmed the near-shore shallow to 

brackish palaeoenvironment identified by Székely & Filipescu 

(2016), characterized by temperate to slightly warmer SSTs, 

stronger  salinity  fluctuations,  increased  terrigenous  material 

runoff and freshwater influx and fluctuations of the distance to 

the shore.

As  a  general  trend,  the  first  sampled  transect  assigned  to  

the NP24 / CP19a Zone (late Rupelian–early Chattian) is domi-

nated by two types of assemblages, while those belonging to 

Clusters  2  and  3  (Figs.  5,  8,  9)  are  characterized  by  high 

amounts of Cyclicargolithus spp. (always prevailing Cy. flori­

danus)  and  small  reticulofenestrids  (especially  R. minuta), 

coupled locally with moderate amounts of temperate — cool 

and cold-water taxa such as Reticulofenestra spp. (R. bisecta 

and  R. daviesii  groups),  C. pelagicus and B. bigelowii  

(Table 2, electr. sup plement). The temperate–warm and sub-

tro pical water taxa, such as Pontosphaera spp., Helicosphaera 

spp.  and  Spheno lithus  spp.  (Table 2,  electr.  sup plement) 

 display moderate to very low amounts.

Fig. 8. Multivariate Clustering Analysis by Ward’s Method.

background image

276

KALLANXHI , BĂLC , ĆORIĆ, SZÉKELY and FILIPESCU

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

The  intervals  with  prevailing  Cy. floridanus (FA4–FA8, 

FA11–FA19, FA22) are associated with stable, meso- to eutro-

phic  open-marine  conditions,  nutrient-rich  waters  (Aubry 

1992; Monechi et al. 2000), without too much water turbu-

lence and no fluctuations in temperature, salinity and nutrient 

content (Auer et al. 2014), while those with increased small 

reticulofenestrids,  known  to  flourish  along  continental  mar-

gins (Haq 1980), reflect eutrophic conditions (Wade & Bown 

2006)  and  high  primary  productivity  under  increased  stress 

factors such as higher contents of terrigenous material derived 

from the continent (Auer et al. 2014). As indicated in Figs. 5 

and 9, intervals with equal participation of Cy. floridanus and 

R. minuta  contents  (Sub-cluster  3a),  are  displayed  in  some 

samples, where apparently a slight decrease in Cy. floridanus 

amount is balanced by an increase in R. minuta, possibly due 

to a moderate run off of continental material.

Contrasting  the  general  stable  open-marine  conditions 

reflected by the diverse nannofossil assemblages of this tran-

sect, supported also by recent data on foraminifera (Székely & 

Filipescu 2016), several short intervals (Fig. 5) reflect a dras-

tic  decrease  in  the  calcareous  nannofossil  content  (samples 

FA1–FA2,  FA9  and  FA29),  while  those  occupied  by  the 

assemblages of sub-cluster 1a, suggest a slight deviation from 

the  normal  marine  stable  palaeoenvironmental  conditions, 

associated  with  the  increased  amounts  of  C. pelagicus

Pontosphaera spp. and Helicosphaera spp. The presence of 

the  above  mentioned  taxa  as  the  main  components  within  

the sub-cluster 1a assemblage, are not easily connected to each 

other’s palaeoecological preferences. The highest amount of 

C. pelagicus,  a  species  known  to  occupy  eutrophic  surface 

waters and upwelling areas (Haq 1980; Rahman & Roth 1990; 

Kameo  &  Sato  2000),  was  recorded  in  sample  FA3  and  is 

associated with the increase of Pontosphaera spp. These two 

species  characterize  this  level  before  the  establishment  of  

the stable marine conditions with dominating Cy. floridanus. 

The next intervals occupied by the sub-cluster 1a assemblage, 

are at the level of sample FA10, and in samples FA23–FA24, 

being marked by the replacement of Cy. floridanus — small 

reticulofenestrids  assemblages  with  C. pelagicusHelico­

sphaera spp.–Pontosphaera spp. associations. Higher amounts 

with  the  open-marine  species  C. pelagicus  suggest  periods 

with  less  surface  water  column  stratification  (Auer  et  al. 

2014), connected to fluctuations in upwelling intensity, possi-

ble increasing of cool-nutrient availability and increased wave 

driven  surface  water  turbulence  or  seasonal  marine  oscilla-

tions. The high amounts of Pontosphaera spp. known to thrive 

under shallow, warmer conditions (Perch-Nielsen 1985b; Firth 

1989), considered to tolerate salinity fluctuations (Krhovský 

et  al.  1992;  Nagymarosy  2000),  in  samples  with  higher 

amounts  of  C. pelagicus  (sub-cluster  1a),  might  indicate 

an opportunistic behaviour of this group and increased tole-

rance of stress factors, such as variation in the type of nutrient 

available (possible cooler nutrient), column-water mixing and 

increased  upwelling  conditions.  The  highest  amounts  of 

Helicosphaera  spp.  at  this  level,  a  taxonomical  group  with 

preference  for  shallow  hemipelagic,  near-shore  upwelling 

conditions (Bukry et al. 1971; Krhovský et al. 1992), supports 

our  assignment  of  Pontosphaera  spp.  group,  to  adapt  to 

increased  nutrient  supply,  increased  upwelling  and  nutrient 

mixing. A slightly increased water salinity as a stress factor  

is not excluded for both Pontosphaera spp. and C. pelagicus 

and goes somehow along with the position of the sub-cluster 

1a samples on the left upper side of the nMDS plot (Fig. 9).  

The  terminal  part  of  Transect  A  (FA30–FA32)  containing 

 samples  assigned  to  sub-cluster  2b  (Figs.  5,  9),  is  marked  

by   domi nance  of  temperate–cool  to  cold  water  species  

of  Reticulofenestra  spp.  and  Cy. floridanus,  indicative  

for  more  meso-  to  eutrophic  sea-surface  waters  and  full  

marine  conditions.  Assemblages  with Cy. floridanus

Reticulofenestra bisecta and Zygrhablithus bijugatus were 

described  by  Melinte  (2005)  as  occurring  together  within  

the Oligocene deposits from Romania and were considered to 

be indicative for warmer conditions with increased nutrients 

available.

The stable open-marine palaeoenvironment which charac-

terize Transect A, continue also in the second outcrop (Fig. 6). 

The nannofossil assemblages of sub-cluster 2c are characte-

rized  by  high  amounts  of  the  open-ocean  species  Cy. flori­

danus, accompanied by the moderate amounts of C. pelagicus, 

Reticulofenestra  spp.  and  less  small  reticulofenestrids,  indi-

cating  more  stable  marine  meso-eutrophic  conditions, 

decreased influx of terrigenous material and implicitly higher 

distance from the shore.

The depositional regime and palaeoenvironment of Transect C 

(Fig.  7)  indicates  in  general  meso-  to  eutrophic  conditions, 

with strong fluctuations in calcareous nannofossil abundance 

and diversity. High-resolution sampling at intervals from 10 to 

30  cm  was  applied,  providing  more  detailed  information.  

As represented on the nMDS plot (Fig. 9), the samples of this 

transect are scattered, indicating highest variability in calca-

reous nannofossil composition and abundance, coupled with 

the most variable palaeoenvironmental conditions. The calca-

reous nannofossil assemblages are dominated by sub-cluster 

1b & 2b & 2c, and cluster 4 (less Cluster 3), indicating abrupt 

short-term  variations  in  basin  conditions,  reflected  also  in  

the blooms of low diverse monospecific assemblages, domi-

nated  by  one  species  or  genus,  coupled  additionally  with  

the presence of more barren intervals (Fig. 7) and supported 

also  by  the  foraminifera  data  (Székely  &  Filipescu  2016).  

The intervals barren of nannofossils and all those where no 

counting was possible (FB1–FB4, FB25–FB40, FB55–FB66 

and  FB70),  and  only  qualitative  data  were  collected,  corre-

spond to those of infrequent foraminifera intervals (Székely & 

Filipescu 2016).

Similar assemblages to those of Transects A and B, domi-

nated by the open-ocean species Cy. floridanus (sub-clusters 

2b & 2c) are met at several levels (FB7–FB8, FB16–FB24, 

FB42, FB46–FB52). The highest peaks of this species (FB8, 

FB16, FB49) are associated with Reticulofenestra spp. >5 µm 

(highest  amount  in  FB22  and  FB52),  with  Cy. abisectus  

(highest amount in FB8, FB16 and FB46), with Reticulofenestra 

gr. 3–5 µm (in FB7 and FB43), less R. minutaPontosphaer

background image

277

OLIGOCENE TRANSITION IN TRANSYLVANIAN BASIN REVEALED BY CALCAREOUS NANNOFOSSILS

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

spp. and Sphenolithus spp. (highest peaks in FB22 and FB46). 

Restoration  of  short  term  eutrophic  marine  conditions,  with 

seasonal  high  primary  productivity  is  also  recorded  by  

the foraminiferal data (Székely & Filipescu 2016).

The  short  intervals  belonging  to  sub-cluster  1b  comprise  

the most intriguing low diverse assemblages, due to the blooms 

of Pontosphaera spp. (Fig. 7h). Among this genus, P. multi­

pora is the dominant species of sub-cluster 1b, while P. pyg­

maea  of  sub-cluster  1a.  It  is  acknowledged  that  this  genus 

thrives  in  shallow,  near  shore  warmer  marine  environments 

(Perch-Nielsen 1985b; Firth 1989, present study), under stable 

marine conditions (Melinte 2005; Bartol et al. 2008; Garecka 

2012) and tolerates some salinity fluctuations (Krhovský et al. 

1992;  Nagymarosy  &  Voronina  1992,  Nagymarosy  2000; 

Garecka  2012).  Several  authors  indicate  adaptability  to 

increased salinity (Báldi-Beke 1984; Melinte 2005; Bartol et 

al. 2008; Garecka 2012) while others identify adaptation to more 

hyposaline conditions (Van Simaeys et al. 2004). The shallo-

wing  trend  indicated  by  calcareous  nannofossil  abundance 

fluctuations were recognized also by means of low abundance 

and low diverse foraminiferal assemblages (Székely & Filipescu 

2016). This interval is comprised between two periods of fully 

marine, meso-eutrophic palaeoenvironment, and indicative of 

high  nutrient  availability,  temperate  to  warmer  SSTs  and 

 normal to slightly increased salinity (Fig. 9). The presence of 

Pontosphaera  spp.  in  association  with  the  Cy. floridanus– 

abisectus  group,  indicates  that  this  genus  can  also  adapt  to 

more stable marine eutrophic conditions, with normal salinity. 

The timing of these blooms, immediately before and after such 

conditions might be due to regional or local seasonal varia-

tions. Two regime models might explain the slightly increased 

sea surface water salinity and the increased amounts of this 

genus. The first one might be associated with the prevailing of 

a warmer drier climate, with reduced connectivity of the area 

to the more marine palaeo-environment, with no/or very little 

continental  riverine  input  into  the  basin.  Seasonal  warming 

and intense evaporation might have triggered the creation of 

shallower intervals with increased sea-surface water salinity, 

eutrophic  near  shore  palaeoenvironment,  as  indicated  by  

the posi tioning of samples FB9, FB11, FB 12 and FB13 on  

the nMDS plot (Fig. 9). The second possibility might be due to 

the combination of reduced seasonal fluvial input, with up wel-

ling of denser more saline nutrient-rich waters to the surface. 

The  intriguing  and  opportunistic  behaviour  of  this  genus  is 

Fig. 9. Non–Metric Multidimensional Scaling (nMDS) showing the clusters distribution according to palaeo-environmental variables.

background image

278

KALLANXHI , BĂLC , ĆORIĆ, SZÉKELY and FILIPESCU

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

given by the many assemblage combinations where it has been 

found  in  our  material.  In  the  Fântânele  section,  excepting  

the cases when this genus is associated with Cy. floridanus–

abisectus and when found alone, it was recorded in association 

with  high  amounts  of  C. pelagicus  and  less  B. bigelowii

co-occurring  together  in  sample  FB41,  which  might  reflect 

a certain tolerance to dense cooler nutrient influx (P. pygmaea 

dominates  this  interval)  caused  by  the  increased  upwelling, 

nutrient  mixing,  not  necessarily  connected  to  cooler  SSTs 

waters. The salinity ranges from normal to slightly hypersa-

line.  The  co-occurrence  together  with  R. minuta  in  sample 

FB43, and the positioning on the nMDS plot (Fig. 9), does not 

necessarily imply a near-shore environment with very shallow 

water depth, but it seems to be more marine and within the 

normal sea surface water salinity, with moderate continental 

material influx and high tolerance of environmental stress.

The uppermost part of this outcrop belonging to cluster 4 

(FB69, FB71–FB73) is associated with blooms of monospe-

cific  assemblages  of  B. bigelowii. Approximately  10  cm  of 

non-calcareous interval is present at the level of sample FB70. 

The  position  of  samples  FB67–FB68  on  the  nMDS  plot  

(Fig. 9) marks the beginning of the shallowest period recorded 

in the Fântânele section, with extreme eutrophication due to 

increased seasonal terrigenous nutrient and fresh water influx, 

near shore high energy wave dominated palaeoenvironment, 

cool nutrient available due to mixing and seasonal upwelling 

and increased precipitation. All these variables taken together, 

might have contributed to the lowered sea-surface waters as 

indicated  by  the  blooms  of  B. bigelowii.  In  additional,  

the sample FB68, displays abundant R. minuta, a species asso-

ciated  with  high  productivity  eutrophic  environment  and 

increased  continental  influx.  B. bigelowii displays  opportu-

nistic behaviour and flourishes under reduced concurrence and 

together  with  R. minuta,  are  considered  indicator  taxa  for 

 tolerance of high environmental stress (Wade & Bown 2006; 

Bartol et al. 2008; Auer et al. 2014; present study). Samples 

FB67–FB68  also  display  a  very  low  abundance  of  forami-

nifera, while samples FB69–FB73 are barren in foraminifera 

(Székely & Filipescu 2016). The absence of planktonic and 

benthic  foraminifera  could  be  explained  by  the  fresh-water 

influence and lower salinity (Székely & Filipescu 2016), as 

also suggested by the calcareous nannofossils. The calcareous 

nannofossil  fluctuations  from  the  last  outcrop  can  be  con-

nected  to  increased  proximity  to  the  shore,  shallowing,  and 

terrigenous  material  influx  and  not  least  to  fluctuations  in 

salinity.  In  the  Central  Paratethys  Realm,  blooms  of 

Braarudosphaera bigelowii in the Oligocene were considered 

to have been caused by the partial separation of the Paratethys 

from the Mediterranean and were connected to the existence 

of  anoxic  environmental  conditions  (Nagymarosy  1991). 

Monospecific assemblages of B. bigelowii are mentioned from 

the early Rupelian (Rusu et al. 1996; Melinte 2005), in both 

the Eastern Carpathians and Transylvanian areas.

The  absence  of  the  warm  open  marine  Discoaster  genus 

(Lohmann & Carlson 1981; Aubry 1992; Young 1998; Villa et 

al.  2008)  coupled  with  the  low  amounts  of  autochthonous 

subtropical warm water taxa (Sphenolithus spp., Helicosphaera 

spp.  and  Zygrhablithus bijugatus)  indicate  shallow  marine 

conditions,  with  temperate  to  cooler  SSTs  for  the  first  and 

 second  outcrops,  and  with  a  slightly  warmer  and  shallow 

marine environment for the youngest one.

Palaeogeographical considerations

The Transylvanian Palaeogene formations crop out and are 

widespread  around  the  northern  parts  of  the  Transylvanian 

Basin, in the Pienide nappes (Krézsek & Bally 2006). Starting 

with the late Rupelian the emplacement of the Pienide nappes 

took place (Sãndulescu et al. 1981), resulting in the deposition 

of coarse-grained siliciclastic sediments (Tischler et al. 2008). 

Differences  in  depositional  settings  from  area  to  area  are 

acknowledged  for  the  late  Rupelian–Chattian  interval.  

The southern part of the basin was exposed and the central part 

was dominated by continental, inner to outer shelf palaeoenvi-

ronments (Petrescu et al. 1989; Rusu 1995; Filipescu 2001). 

The  situation  in  the  northern  part  of  the  basin  was  totally 

 different, a deeper marine environment (Vima Formation) and 

slope/outer to middle fan dominated (Valea Carelor, Birţu and 

Borşa Formations) (Mészáros et al. 1971; Dicea et al. 1980). 

The more marine character of these deposits and the north-

ward thickening of the Oligocene successions in the area are 

due  to  a  flexural  down-bending  caused  by  the  emerging  of  

the Pienides nappes (Săndulescu & Micu 1989; Aroldi 2001; 

Tischler  et  al.  2008).  Several  authors  considered  the  late 

Rupelian sediments to be transgressive (Rusu 1989; Popescu 

& Brotea 1994; De Broucker et al. 1998; Ciulavu et al. 2000), 

but  the  Chattian  siliciclastic  sediments  to  be  progradational 

(Krézsek & Bally 2006). During the Chattian, important sedi-

mentary changes occurred in relation to the climate cooling 

(Abreu & Haddad 1998) and to the global eustatic sea-level 

fall (Hardenbol et al. 1998). 

The  palaeoenvironmental  reconstruction  of  the  Fântânele 

section  highlights  the  development  of  the  north-western 

Transylvanian  Basin  in  the  Paratethyan  settings  during  

the  Oligocene  (Székely  &  Filipescu  2016).  Tischler  et  al. 

(2008) pointed out that the late Rupelian–early Chattian pro-

gradational  phases  do  not  match  to  the  global  eustatic  sea-

level changes of Haq et al. (1987). Székely & Filipescu (2016) 

connected the foraminifera abundances within the Fântânele 

 section with high-frequency sequences associated with 4

th

 or 

5

th

 order relative sea-level oscillations for Transects A and B, 

while the strong progradational trend observed in Transect C 

suggests  an  increased  continental  influence.  These  data  are 

also  supported  by  the  calcareous  nannofossil  changes  along 

the section, changes which might be due to episodic isolation 

of the basin and to tectonic activity in the area. A sedimentary 

hiatus  was  observed  at  the  top  of  the  Vima  Formation 

(Hofmann 1887; Majzon 1950; Popescu 1971; Popescu & Iva 

1971), highlighting the possibility that these sediments could 

have  been  eroded  as  a  result  of  a  sea-level  fall  (Székely  & 

Filipescu 2016) which gave a diachronic upper boundary for 

the Vima Formation.

background image

279

OLIGOCENE TRANSITION IN TRANSYLVANIAN BASIN REVEALED BY CALCAREOUS NANNOFOSSILS

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

Conclusions

Biostratigraphically, based on the presence and overlapping 

ranges of several marker species, the investigated sediments 

were dated as belonging to the late Rupelian–Chattian  interval. 

Correlation to the following biozones was possible: the NP24 

—  Sphenolithus distentus Zone,  the  NP25  —  Spheno  lithus 

ciperoensis Zone, the CP19a — Cyclicargolithus floridanus 

Subzone,  the  CP19b  —  Dictyococcites bisectus  Subzone,  

the CNO4 — Sphenolithus distentus / Sphenolithus predistentus 

CRZ, and the CNO5 — Sphenolithus ciperoensis TZ.

Several  bioevents  for  the  Oligocene  subdivision  were 

 discussed  and  the  following  were  considered  as  reliable  for  

the investigated interval: the LO of Sphenolithus predistentus

the LO of Sphenolithus distentus, the FO of Pontosphaera cf. 

enormis.  Important  marker  species  such  as  Helicosphaera 

recta and Sphenolithus ciperoensis were recorded.

Variations  in  the  abundance  of  autochthonous  calcareous 

nannofossils  and  the  clusters  distribution  along  the  investi-

gated  interval,  allowed  the  palaeoenvironmental  reconstruc-

tion of the Fântânele Section. Alternations from open marine 

to shallower conditions are documented here.

Intervals  with  short-term  abrupt  changes  in  nannofossil 

composition and abundance are associated with the blooms of 

Pontosphaera  spp.  and  B. bigelowii.  New  insights  on 

Pontosphaera  genus  palaeoecology  indicates  opportunistic 

behaviour, quick response to fast changes in the environment, 

increased  tolerance  of  stress  factors  and  great  adaptability  

to  a  wide  range  of  palaeoenvironmental  conditions,  from 

 normal fully marine to shallower, to the type and availability 

of   nutrient  content,  normal  to  increased  salinity,  nutrient 

 mixing and increased upwelling intensity in the upper water 

column.

Acknowledgements: This work was possible due to the finan-

cial support of the Sectoral Operational Program for Human 

Resources  Development  2007–2013,  co-financed  by  

the  European  Social  Fund,  under  the  project  number  POS-

DRU/159/1.5/S/132400  with  the  title  “Young  successful 

 researchers  —  professional  development  in  an  international 

and  interdisciplinary  environment”,  and  to  the  “Erasmus + 

Traineeship”  mobility  in  the  period  March–June  2016,  at  

the Montanuniversität Leoben, Austria. The work of Székely 

Szabolcs–Flavius is a result of doctoral research made possi-

ble  by  the  financial  support  of  the  Sectoral  Operational 

 Programme for Human Resources Development 2007–2013, 

co-financed by the European Social Fund, under the project 

POSDRU/159/1.5/S/133391  —  “Doctoral  and  postdoctoral 

excellence  programs  for  training  highly  qualified  human 

 resources for research in the fields of Life Sciences, Environ-

ment  and  Earth”.  Ramona  Bălc  thanks  the  CNCSIS– 

UEFISCSU,  project  PN–III–P3–3.6–H2020–2016–0015  for 

the financial support. We would like to express our gratitude to 

Marta  Oszczypko-Clowes  and  Mihaela  Carmen  Melinte- 

Dobrinescu, for their suggestions which improved the quality 

of our manuscript.

References

Abreu  V.S.  &  Haddad  G.A.  1998:  Glacioeustatic  Fluctuations:  

The Mechanism linking stable isotope events and sequence stra-

tigraphy from the Early Oligocene to Middle Miocene. SEPM 

Spec. Publ. 60, 245–259.

Agnini C., Fornaciari E., Raffi I., Catanzariti R., Pälike H., Backman J. 

&  Rio  D.  2014:  Biozonation  and  biochronology  of  Paleogene 

calcareous nannofossils from low and middle latitudes. Newslett. 

Stratigr. 47, 2, 131–181. 

Aroldi  C.  2001:  The  Pienides  in  the  Maramureș.  Sedimentation, 

 Tectonics  and  Paleogeography. Cluj­University Press, Cluj- 

Napoca, 1–156.

Aubry M.-P. 1992: Late Paleogene calcareous nannoplankton evolu-

tion:  a  tale  of  climatic  deterioration.  In:  Prothero  D.R.  & 

 Berggren  W.A.  (Eds.):  Eocene–Oligocene  climatic  and  biotic 

evolution. Princeton Univ. Press, 272–309. 

Auer G., Piller W.E. & Harzhauser M 2014: High-resolution calca-

reous nannoplankton palaeoecology as a proxy for small-scale 

environmental  changes  in  the  Early  Miocene.  Mar. Micro­

paleontol. 111, 53–65. 

Báldi T. 1969: On the Oligocene and Miocene stages of the Central 

Paratethys  and  on  the  formations  of  the  Egerian  in  Hungary. 

Ann. Univ. Sci., Sec. Geol. XII (1968), 12, 19–28.

Báldi T. 1980: The early history of the Paratethys. Bulletin of Hunga­

rian Geological Society 110, 456–472.

Báldi T. 1986: Mid-Tertiary stratigraphy and paleogeographic evolu-

tion of Hungary. Akad. Kiadó, Budapest, 12–93.

Báldi-Beke M. 1984: The nannoplankton of the Transdanubian Paleo-

gene  formations.  Geol. Hung.,  Ser. Paleontologica 43,  Inst. 

Geol. Hung., Budapest, 1–307.

Bartol M., Pavšič J., Dobnikar M. & Bernasconi S.M. 2008: Unusual 

Braarudosphaera bigelowii and Micrantholithus vesper enrich-

ment  in  the  Early  Miocene  sediments  from  the  Slovenian 

 Corridor,  a  seaway  linking  the  Central  Paratethys  and  the 

 Mediterranean. Palaeogeogr. Palaeoclimatol. Palaeoecol. 267, 

77–88.

Berger  J.-P.  1996:  Cartes  paleogeographiques-palinspastiques  du 

bassin molassique suissc (Oligocene inferieur-Miocene moyen). 

Neues Jahrb. Geol. Palaontol., Abh. 202, 1, 1–44. 

Berggren W.A., Kent D.V., Swisher C.C. & Aubry M.–P. 1995: A re-

vised Cenozoic geochronology and chronostratigraphy. Society 

of Economics Paleontologists and Mineralogists Special Publi­

cation 54, 129–212.

Blaj T. & Young J.R. 2010: A new Oligocene Triquetrorhabdulus spe-

cies, T. longus sp. nov. J. Nannoplankton Res. 31, 1, 1–4.

Bown P.R. & Young J.R. 1998: Techniques. In: Bown P.R. (Ed.): Cal-

careous nannofossil biostratigraphy. Kluwer Academic Publica­

tions, Dordrecht, 16–28. 

Bukry  D.,  Douglas  R.G.,  King  S.A.  &  Krasheninnikov  V.  1971: 

Planktonic  microfossil  biostratigraphy  of  the  north-western 

 Pacific Ocean. In: Heezen B. et al. (Eds.): Initial Reports of the 

Deep Sea Drilling Project 6, 1253–1300. 

Ciulavu D., Dinu C., Szakács A. & Dordea D. 2000: Neogene kine-

matics of the Transylvanian Basin, Romania. AAPG Bull. 84, 10, 

1589–1615.

Coccioni  R.  et  al.  2008:  Integrated  stratigraphy  of  the  Oligocene 

 pelagic  sequence  in  the  Umbria–Marche  basin  (north-eastern 

Apennines,  Italy):  a  potential  Global  Stratotype  Section  and 

Point (GSSP) for the Rupelian/Chattian boundary. Geol. Soc. of 

America Bull. 120, 487–511.

Coccioni  R.  et  al.  2017:  The  Global  Stratotype  Section  and  Point 

(GSSP) for the base of the Chattian Stage (Paleogene System, 

Oligocene  Series)  at  Monte  Cagnero,  Italy.  Episodes 41, 1,  

17–32. 

background image

280

KALLANXHI , BĂLC , ĆORIĆ, SZÉKELY and FILIPESCU

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

De Broucker G., Mellin A. & Duindam P. 1998: Tectono-Stratigraphic 

evolution of the Transylvanian Basin, pre-salt sequence, Roma-

nia. In: Dinu C. & ocanu V. (Eds.), Geological and Hydrocarbon 

potential of the Romanian areas. Bucharest Geosciences Forum 

1, 36–70.

De Man E., Ivany L. & Vandenberghe N. 2004: Stable oxygen isotope 

record of the Eocene-Oligocene transition in the southern North 

Sea  Basin:  positioning  the  Oi-1  event.  Netherlands Jour. of 

 Geosciences 83, 3, 193–197.

Dicea O., Duţescu P., Antonescu F., Mitrea G., Botez R., Donos I., 

Lungu V. & Moroşanu I. 1980: Contribution to the knowledge  

of  Maramures`s  Transcarpathian  Zone  stratigraphy.  Darea  

de Seamă Inst. Geol. GeofBucharest 65, 4, 21–85 (in Roma-

nian).

Fornaciari E., Raffi I., Rio D., Villa G., Backman J. & Olafsson G. 

1990: Quantitative distribution patterns Oligocene and Miocene 

calcareous  nannofossils  from  the  western  equatorial  Indian 

Ocean.  In:  Duncan  R.A.,  Backman  J.,  Peterson  L.C.  et.  al.  

(Eds.): Proc. of the Ocean Drill. Progr., Scientific Results 115, 

237–254. 

Filipescu S. 2001: Cenozoic lithostratigraphic units in Transylvanian. 

In: Bucur I., Filipescu S. & Săsăran E. (Eds.): Algae and carbo-

nate platforms in western part of Romania. Field trip guide book 

4

th

 Regional Meeting of IFAA, Cluj­Napoca, Romania. Cluj Univ. 

Press, 77–92.

Filipescu S. 2011: Cenozoic lithostratigraphic units in Transylvania. 

In: Bucur I.I. & Săsăran E. (Eds.), Calcareous algae from Roma-

nian  Carpathians. Field Trip Guide Book, Tenth International 

Symposium on Fossil Algae, Cluj­Napoca, Romania, 12–18 Sep­

tember. Cluj University Press, 37–48.

Firth J. 1989: Eocene and Oligocene Calcareous Nannofossils from 

the Labrador Sea, ODP Leg 105. In: Srivastra S.P., Arthur M., 

Clement B. et al. (Eds.): Proc. of the Ocean Drill. Progr. Scient. 

Res. 105, 263–286. 

Garecka  M.  2005:  Calcareous  nannoplankton  from  the  Podhale 

 Flysch (Oligocene–Miocene, Inner Carpathians, Poland). Stud. 

Geol. Polonica 124, 353–369.

Garecka M. 2012: Record of the changes in the Oligocene–Miocene 

sediments of the Menilite-Krosno series of the Skole Unit based 

on  calcareous  nannoplankton  studies-biostratigraphy  and 

palaeo geographical  implications  (Polish  Outer  Carpathians). 

 Biuletyn Pañstwowego Instytutu Geologicznego 453, 1–22.

Garecka M. & Szydło A. 2011: Limestone nannoplankton and fora-

minifera  of  the  youngest  beds  of  the  Magura  Unit  (Northern 

Racza zone, Polish External Carpathians). In: Boorová D. (Ed.): 

12.  paleontolo gická  konferencia.  Zborník  príspevkov.  Brati-

slava, Slovenská republika, 20–21. októbra 2011. Konferencie. 

Sympóziá. Simináre. Štátny geologický ústav D. Štúra,  Brati-

slava, 40–41 (in Polish).

Garecka M. & Szydło A. 2015: Calcareous nannofossils and forami-

nifera from the youngest deposits of the Siary Subunit (Oligo-

cene,  Magura  Nappe,  Polish  Outer  Carpathians).  Ann. Soc. 

Geologorum Poloniae 85, 205–219.

Garecka M., Szydło A. & Kopciowski R. 1998: Limestone nanno-

plankton and foraminifera of the youngest beds of the Magura 

Unit (Siary Zone).Posiedzenia Naukowe Pañstwowego Instytutu 

Geologicznego 54, 83–86 (in Polish).

Gheţa  N.,  Popescu  G.  &  Leu  M.  1976:  Reticulofenestra ornata 

Müller, a marker nannoplankton species in the Middle Oligo-

cene. Rev. Roum. Geol. 20, 1, 143–145.

Giuşcă  D.  &  Rădulescu  D.  1967:  Geological  Map  of  Romania  

1:200,000, page 3 Baia Mare, L–34–VI, M–34–XXXVI. Comi­

tetul de Stat al Geologiei, Institutul Geologic (in Romanian).

Gradstein F.M., Ogg J.G., Schmitz M.D. & Ogg G.M. (Eds.) 2012: 

The  Geological  Time  Scale  2012.  2  volumes,  Elsevier

 Amsterdam, 1–1144.

Haczewski  G.1989:  Coccolith  limestone  horizons  in  the  Menilite 

 Krosno Series (Oligocene, Carpathians): identification, corre lation, 

and origin. Ann. Soc. Geol. Pol. 59, 3–4, 435–523 (in Polish).

Hammer Ø.  &  Harper  D.A.T.  2006:  Paleontological Data Analysis  

(1

st

 ed.). Blackwell Publishing Ltd., Oxford.

Hammer Ø., Harper D.A.T. & Ryan P.D. 2001: PAST: Paleontological 

Statistics  Software  Package  for  Education  and  Data Analysis. 

Palaeontol. Electr. 4, 1–9.

Haq B.U. 1980: Biogeographic history of Miocene calcareous nanno-

plankton and paleoceanography of the Atlantic Ocean. Micro­

paleontology 26, 4, 414–443. 

Haq B.U., Hardenbol J. & Vail P.R. 1987: The chronology of fluctua-

ting sea level since the Triassic. Science 235, 1156–1167.

Hardenbol J., Thiery J., Farley M.B., Jaquin T., Graciansky P.C. & Vail 

P.R. 1998: Mesozoic and Cenoizoic Sequence Chronostratigraphic 

Framework of European Basins. SEPM Spec. Publ. 60, 3–13.

Hofmann  K.  1887:  Geologische  Notizen  über  die  Kristallinische 

Schieferinsel von Preluka (Preluca) und über das nördlich und 

südlich auschliessende Tertiarland. Jahresbericht der Königlich 

ungarischen Geologischen Anstalt für 1885, 31–61.

Ionescu A. & Popescu Gh. 1995: Correlation of Oligocene and Mio-

cene planktonic foraminifera and palinomorphs assemblages in 

the  Vima  Formation  (northern  Transylvania).  X­th R.C.M.N.S 

Congr., Abstr., R.J. of Stratigr., 76, 7/1, 45–47.

Kameo  K.  &  Sato  T.  2000:  Biogeography  of  Neogene  calcareous 

 nannofossils in the Caribbean and the eastern equatorial Pacific 

-  floral  response  to  the  emergence  of  the  Isthmus  of  Panama. 

Mar. Micropaleont. 39, 14, 210–218. 

King  D.J.  &  Wade  B.S.  2017:  The  extinction  of  Chiloguembelina 

cubensis in the Pacific Ocean: implications for defining the base 

of  the  Chattian  (upper  Oligocene).  Newslett. Stratigr. 50, 3, 

311–339. 

Kopciowski  R.  &  Garecka  M.  1996: The  youngest  deposits  of  the 

Siary Zone — Magura Unit. Przegląd Geologiczny 44, 486–488 

(in Polish with English summary).

Köthe A. 1990: Paleogene dinoflagellates from northwest Germany 

—  biostratigraphy  and  paleoenvironment.  Geologisches Jahr­

buch A 118, 3–111.

Krézsek C. & Bally A.W. 2006: The Transylvanian Basin (Romania) 

and its relation to the Carpathian fold and thrust belt: In-sights in 

gravitational salt tectonics. Mar. Petrol. Geol. 23, 4, 405–442. 

Krhovský  J.,  Adamová  J.,  Hladíková  J.  &  Maslowská  H.  1992: 

Palaeo environmental  changes  across  the  Eocene/Oligocene 

boundary  in  the  Ždánice  and  Pouzdřany  Units  (Western  Car-

pathians,  Czechoslovakia):  The  long–term  trend  and  orbitally 

forced  changes  in  calcareous  nannofossil  assemblages.  In: 

 Hamršmíd B. & Young J. (Eds.): Nannoplankton Research. Pro­

ceedings of Fourth INA Conference, Prague, 1991, Knihovnička 

ZPN 14b, 2, 105–187.

Laskarev V. 1924: Sur les equivalents du Sarmatien superieur en Ser-

bie: In: P. Vujevic (Ed.): Recueil de travaux offert a M. Jovan 

Cvijic par ses amis et collaborateurs. Beograd, 73–85.

Lăzărescu  V.  1957:  On  a  new  species  of  Coeloma  and  palaeoeco-

logical considerations on the gills. Buletin științific, Secția de 

geologie și geografie, Academia Republicii Populare Romîne 2, 

3–4, 665–682 (in Romanian).

Lohmann G.P. & Carlson J.J. 1981: Oceanographic significance of 

Pacific  late  Miocene  calcareous  nannoplankton.  Mar. Micro­

paleont. 6, 553–579. 

Majzon L. 1950: Geology of the Region between Magyarlápos and 

Dés. Magyar Állami Földtani Intézet Évi jelentése 1943, évről 2, 

259–287 (in Hungarian).

Martini E. 1971: Standard Tertiary and Quaternary calcareous nanno-

plankton zonations. In: Farinacci A. (Ed.): Proceedings 2

nd

 Inter-

national Conference on Planktonic Microfossils Roma 1970. Ed. 

Tecnoscienza, Rome 2, 739–785.

background image

281

OLIGOCENE TRANSITION IN TRANSYLVANIAN BASIN REVEALED BY CALCAREOUS NANNOFOSSILS

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

Martini  E.  1981:  Nannoplankton  in  der  Ober–Kreide,  im Alttertiär 

und  im  tieferen  Jungtertiär  von  Süddeutschland  und  dem  an-

grenzenden österreich. Geologia Bavarica 82, 345–356.

Martini  E.  &  Moisescu  V.  1974:  Investigations  of  the  Oligocene 

 deposits between Cluj and Huedin (north–western of the Tran-

sylvanian  Basin,  Romania).  N. Jb. Geol. Paläont.  18–37  (in 

 German).

Martini  E.  &  Müller  C.  1975:  Calcareous  nannoplankton  from  the 

type Chattian (Upper Oligocene). 6

th

 Congress Regional Com­

mittee  on Mediterranean Neogene Stratigraphy, Bratislava 1, 

37–41.

Mărunţeanu M. 1992: Distribution of the Miocene calcareous nanno-

fossils in the Intra and Extra Carpathian areas of Romania. In: 

Hamršmíd  B.  & Young  J.R.  (Eds.):  Nannoplankton  Research. 

Proceedings of Fourth INA Conference,  Prague, 1991,  Kni­

hovnička ZPN 14b, 2, 247–263.

Melinte  M.  2005:  Oligocene  palaeoenvironmental  changes  in  the 

 Romanian  Carpathians,  revealed  by  calcareous  nannofossils. 

Studia Geologica Polonica 124, 341–352.

Melinte-Dobrinescu M. & Brustur T. 2008: Oligocene–Lower Mio-

cene events in Romania. Acta Palaeont. Romaniae 6, 203–215.

Mészáros N. 1984: Nannoplankton zones in the Paleogene and Neo-

gene deposits of the Transylvanian Basin. Anuarul Instit. de Ge­

ologie şi Geofizică 64, 270–273.

Mészáros N. 1991: Nannofossils zones in the Paleogene and Miocene 

deposits of the Transylvanian Basin). In: Hamršmid B. & Young 

J. (Eds.): Nannoplankton Research. Proceedings of Fourth INA 

Conference, Prague, 1991, Knihovnička ZPN 14b, 2, 87–92.

Mészáros  N.  &  Ghergari  L.  1979:  Lithological  and  stratigraphical 

studies of the Tertiary deposits from Rohia region (Tîrgu Lăpuş). 

Studia Universitatis Babeş–BolyaiGeologia–Geografia 24, 2, 

37–47 (in Romanian).

Mészáros N. & Ianoliu C. 1989: Nannoplankton zones in the Oligo-

cene  deposits  in  the  north–western  Transylvanian  Basin;  In: 

 Petrescu I. (Ed.): The Oligocene from the Transylvanian Basin, 

Romania. Univ. of Cluj–Napoca, Geology–Mineralogy Depart­

ment, Special Issue, Cluj–Napoca, 157–162.

Mészáros N. & Marosi M. 1957: The abundance of species Variamus­

sium jallaxin in the inner Carpathian belt. An. Rom. Sov., Seria 

Geologie–Geografie, Bucureşti 11, 3 (in Romanian).

Mészáros N., Iloaie C., Stamp W. & Szabó N. 1971: The Paleogene 

from  the  southern  border  of  the  Rodna  Mountains.  Darea de 

Seamă Inst. Geol. Geofiz. Seria Geologia – Mineralogia 1, Bu-

charest, 33–41 (In Romanian).

Mészáros  N.,  Lebenzon  C.  &  Ianoliu  C.  1973:  Eocene-Oligocene 

boundary in Hoia hill, Cluj-Napoca, established by calcareous 

nannoplankton  means.  Studia  Univ.  Babeș-Bolyai,  Ser.  Geol.-

Min 1, 61–69.

Mészáros N., Gheţa N. & Ianoliu C. 1979: Nannoplankton zones in 

the  Paleogene  deposits  from  the  Transylvanian  basin.  Muz. 

Bruckental, Studii şi ComunicăriŞt. Nat. Sibiu 23, 73–80 (in 

Romanian).

Monechi  S.,  Buccianti  A.  &  Gardin  S.  2000:  Biotic  signals  from 

 nannoflora across the iridium anomaly in the upper Eocene of 

the Massignano section: evidence from statistical analysis. Mar. 

Micropaleont. 39, 219–237.

Nagymarosy A. 1990: Paleogeographical and paleotectonical outlines 

of  some  intracarpathian  Paleogene  basins.  Geol. Zbor. Geol. 

Carpath. 41, 3, 259–274.

Nagymarosy A. 1991: The response of the calcareous nannoplankton 

to the Early Oligocene separation of the Paratethys. 4

th

 Interna­

tional Nannoplankton Assoc. Conf. Abstr.,  Prague  1991.  INA 

Newsletter 13, 2, 62–63.

Nagymarosy A. 2000: Lower Oligocene nannoplankton in anoxic de-

posits of the central Paratethys. 8th International Nannoplank­

ton Assoc. Conf., Bremen. J. Nannoplankton Res. 22, 128–129.

Nagymarosy A. & Voronina A. A. 1992: Calcareous nannoplankton 

from  the  Lower  Maikopian  beds  (Early  Oligocene,  Union  of 

 Independent  States).  In:  Hamršmíd  B.  &  Young  J.R.  (Eds.): 

Nannoplankton  Research. Proc. of Fourth INA Conference

Prague 1991, Knihovnička ZPN 14b, 2, 187–221.

Okada H. & Bukry D. 1980: Supplementary modification and intro-

duction of code numbers to the low latitude coccolith biostrati-

graphic  zonation  (Bukry  1973,  1975).  Mar. Micropaleont. 5, 

321–325. 

Olafsson  G.  &  Villa  G.  1992:  Reliability  of  sphenoliths  as  zonal 

markers  in  Oligocene  sediments  from  the Atlantic  and  Indian 

Oceans. Mem. Sci. Geol. 43, 261–275.

Olteanu  R.  1980:  Evolution  de  la  communaute  d’Ostracodes  dans 

l’Oligocène du NO de la Transylvanie. Rev. Rom. Géol., Géo­

phys. et Géogr. Bucureşti 24, 177–178.

Olteanu R. 2002: Oligocene–Miocene boundary in the Transylva-

nian  Basin  (Ostracoda,  Crustacea).  Rev. Roum. Geol.  46,    

12–136.

Oszczypko-Clowes M. 2001: The nannofossils biostratigraphy of the 

youngest deposits of the Magura Nappe (east of Skawa River, 

Polish Flysch Carpathians) and their palaeoenviron mental con-

ditions. Ann. Soc. Geologorum Poloniae 71, 139–188.

Oszczypko-Clowes  M.  2010:  Calcareous  nannoplankton  biostrati-

graphy of the terminal sediments of the Magura basin — a case 

study  of  the  Polish  sector  (Outer  Western  Carpathians).  In: 

Christofides  G.,  Kantiranis  N.,  Kostopoulos  D.  S.  &  Chatzi-

petros A. (Eds.): Proceeding of the XIX CBGA Congress, Thes-

saloniki, Greece, 23–26 September 2010. Scientific Annals of the 

School of GeologyAristotle University of ThessalonikiFaculty 

of SciencesSpecial volume 100, 231–240.

Oszczypko-Clowes  M.  &  Ślączka  A.  2006:  Nannofossil  biostrati-

graphy of the Oligocene deposits in the Grybów tectonic window 

(Grybów  Unit,  Western  Carpathians,  Poland).  Geol. Carpath

57, 6, 473–482.

Oszczypko–Clowes M. & Żydek B. 2012: Paleoecology of the Upper 

Eocene–Lower Oligocene Malcov Basin based on the calcareous 

nannofossils:  a  case  study  of  the  Leluchów  section  (Krynica 

Zone, Magura Nappe, Polish Outer Carpathians). Geol. Carpath. 

63, 2, 149–164. 

Ozdínová S. 2013: Paleoecological evaluation of calcareous nanno-

fossils  from  the  Eocene  and  Oligocene  sediments  of  the  Sub-

tatric Group of the Western Carpathians. Mineralia Slovaca 45, 

1–10.

Ozdínová S. & Soták J. 2014: Oligocene–Early Miocene planktonic 

microbiostratigraphy  and  paleoenvironments  of  the  South 

 Slovakian  Basin  (Lučenec  Depression).  Geol. Carpath. 65, 

 451–470.

Perch-Nielsen K. 1985a: Mesozoic calcareous nannofossils. In: Bolli 

H.M., Saunders J.B. & Perch-Nielsen K. (Eds.): Plankton Stra-

tigraphy  Volume  1.  Cambridge University Press, Cambridge

329–426.

Perch–Nielsen K. 1985b: Cenozoic calcareous nannofossils. In: Bolli 

H.M., Saunders J.B. & Perch–Nielsen K. (Eds.): Plankton stra-

tigraphy. Cambridge University Press, 427–554.

Petrescu I., Ghergari L., Mészáros N., Nicorici E. & Şuraru N.1989: 

The  Oligocene  from  the  Transylvanian  Basin,  Romania.  In: 

 Petrescu  et  al.  (Eds.):  Geological  Formations  of Transilvania, 

Romania 2. Cluj-Napoca, Romania, 636.

Popescu Gh. 1971: Biostratigraphy of the Oligocene–Miocene depo-

sits from the south of Preluca, based on planctonic foraminifera. 

Dări  de  seamă  ale  ședințelor.  Inst.  Geol.  58,  3,  105–127  (in 

 Romanian).

Popescu Gh. 1972: The subfamily Cyclammininae (Foraminiferida) 

in  the  Oligocene–Miocene  from  the  Northern  Transylvania. 

 Studii  şi  Cercetări  Geologice,  Geofizice  şi  Geografice,  Seria 

Geologie 17, 1, 299–321 (in Romanian).

background image

282

KALLANXHI , BĂLC , ĆORIĆ, SZÉKELY and FILIPESCU

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

Popescu  Gh.  1975.  Études  des  foraminiféres  du  Miocène  inférieur  

et  moyen  du  nordouest  de  la  Transylvanie.  Mém. Inst. Géol. 

Géophys. 23, 1–121.

Popescu Gh. & Brotea D. 1989: Genus Protentella (Foraminifera) in 

the north Transylvania Oligocene. In: Petrescu I. (Ed.): The Oligo-

cene  from  the  Transylvanian  Basin,  Romania.  University of 

Cluj–Napoca, Geol.–Min. Dep., Spec. Iss., Cluj–Napoca, 255–260.

Popescu Gh. & Gheţa N. 1972: Calcareous nannoplankton from brio-

zoan marls beds from west of Cluj, Transylvanian Basin. Dări 

de Seamă, Inst. Geol. 58, 3, 129–140 (in Romanian).

Popescu Gh. & Iva M. 1971: Contribution à la connaissance de la 

microfaune  Oligocene  des  couches  de  Valea  Lăpușului. 

 Memoires etudes Micropaleontologie 14, 35–51.

Popov S.V., Rögl F., Rozanov A.Y., Steininger F.F, Shcherba I.G & 

Kovac  M.  2004:  Lithological–Paleogeographic  maps  of  Para-

tethys  10  maps  Late  Eocene  to  Pliocene.  Cour. Forsch.–Inst. 

Senckenberg 250, 1–46.

Pross J., Houben A.J.P., van Simaeys S., Williams G.L., Kotthoff U., 

Coccioni  R.,  Wilpshaar  M.  &  Brinkhuis  H.  2010:  Umbria- 

Marche revisited: a refined magnetostratigraphic calibration of 

dinoflagellates  cyst  events  for  the  Oligocene  of  the  Western 

Tethys. Review of Paleobotany and Palynology 158, 213–235.

Rahman A. & Roth P.H. 1990: Late Neogene paleoceanography and 

paleoclimatology of the Golf of Aden region based on calcareous 

nannofossils. Paleooceanography 5, 1, 91–107. 

Rögl F. 1998: Paleogeographic considerations for Mediterranean and 

Paratethys  seaways  (Oligocene  to  Miocene).  Ann. Naturhist. 

Mus. Wien 99A, 279–310.

Rögl F. 1999: Mediterranean and Paratethys. Facts and hypotheses of 

an  Oligocene  to  Miocene  paleogeography  (short  overview). 

Geol. Carpath. 50, 339–349.

Rögl F. & Steininger F.F. 1983: Vom Zerfall der Tethys zu Mediterran 

und Paratethys. Die Neogene Paläogeographie und Palinspastik 

des  zirkum-Mediterranen  Raumes. Ann. Nat. Hist. Mus. Wien 

85/A, 135–163.

Rusu A. 1969: Sur la limite Olicocène–Miocène dans le Bassin de 

Transylvanie. Rev. Roum. Geol. Geogr. Geophys, Geologie 13, 

2, 203–216.

Rusu A.  1970:  Facies  correlation  of  the  Oligocene  from  Treznea- 

Bizuşa  area  (northwest  Transylvanian  Basin).  Stud.  Cercetări 

Geol. Geofizice Geograf. Ser. Geol. 15, 2, 513–525.

Rusu A. 1977: Oligocene stratigraphy from the north-western Transil-

vanian basin (Treznea–Hida–Poiana Blenchii). Anuarul Inst. de 

Geol. şi Geofizica, Bucureşti, LI (in Romanian).

Rusu A. 1988: Oligocene events in Transylvania (Romania) and the 

first separation of Paratethys. Dări de Seamă ale Institutului de 

Geologie şi Geofizică 72/73, 207–223.

Rusu A. 1989: Problems of correlation and nomenclature concerning 

the Oligocene formations in NW Transylvanian. In: Petrescu I., 

Gherghari L., Mészáros N., Nicorici E. & Şuraru N. (Eds.): The 

Oligocene  from  the  Transylvanian  Basin.  Geological Forma­

tions of Transylvania, Romania 2, Cluj-Napoca,  Romania,  

55–60.

Rusu A. 1995: Eocene formations in the Călata region (NW Transyl-

vania): a critical review. Rom. Journ. Tect. Reg.Geol. Bucharest, 

76, 59–72.

Rusu A., Popescu Gh. & Melinte M. 1996: Oligocene–Miocene tran-

sition and main geological events in Romania. Excursion Guide 

of IGCP Project No.326. Romanian Journal of Stratigraphy 76, 

1, 3–47.

Săndulescu M. & Micu M. 1989: Oligocene paleogeography of the 

East Carpathians. In: Petrescu I. (Ed.): The Oligocene from the 

Transylvanian  Basin,  Romania.  University of Cluj–Napoca, 

 Geol.–Min. Dep., Spec. Iss., Cluj–Napoca, 79–86.

Săndulescu M., Kräutner H.G., Balintoni I., Russo-Săndulescu D. & 

Micu M. 1981: The Structure of the East Carpathians. (Guide 

Book B1), Carpatho­Balkan Geological Association 12th Con­

gress, Bucharest, 1–92.

Schultz H.-M., Bechtel A, Rainer T, Sachsenhofer R.F. & Struck U. 

2004: Paleogeography of the Western Central Paratethys during 

Early  Oligocene  nannoplankton  zone  NP23  in  the  Austrian 

 Molasse Basin. Geol. Carpath. 55, 4, 311–323.

Sissingh W. 1997: Tectonostratigraphy of the North Alpine Foreland 

Basin: Correlation of tertiary depositional cycles and orogenic 

phases. Tectonophysics 282, 223–256.

Soták J. 2010: Paleoenvironmental changes across the Eocene–Oligo-

cene boundary: insights from the Central-Carpathian Paleogene 

Basin. Geol. Carpath. 61, 5, 393–418.

Székely S.-F. & Filipescu S. 2015: Taxonomic record of the Oligo-

cene benthic foraminifera from the Vima Formation (Transylva-

nian Basin, Romania). Acta Palaeontol. Rom. 11, 1, 25–62.

Székely S.-F. & Filipescu S. 2016: Biostratigraphy and paleoenviron-

ments of the Late Oligocene in the north-western Transylvanian 

Basin  revealed  by  the  foraminifera  assemblages.  Palæogeogr. 

Palæoclimatol. Palæoecol. 449, 484–509.

Tischler  M.,  Matenco  L.,  Filipescu  S.,  Gröger  H.R.,  Wetzel A.  & 

 Fügenschuh B. 2008: Tectonics and sedimentation during con-

vergence of the ALCAPA and Tisza-Dacia continental blocks: 

the Pienide nappe emplacement and its foredeep (N. Romania). 

In:  Siegesmund  S.,  Fügenschuh  B.  &  Froitzheim  N.  (Eds.): 

 Tectonic  Aspects  of  the  Alpine-Dinaride-Carpathian  System. 

Geol. Soc. London, Spec. Publ. 298, 317–334.

Van  Simaeys  S.,  De  Mann  E.,  Vandenberghe  N.,  Brinkhuis  H.  & 

Steurbaut 2004: Stratigraphic and paleoenvironmental analysis 

of the Rupelian–Chattian transition in the type region: evidence 

from  dinoflagellate  cysts,  foraminifera  and  calcareous  nanno-

fossils. Palaeogeogr. Palaeoclimatol. Palaeoecol. 208, 31–58.

Van Simaeys S., Brinkhuis H., Pross J., Williams G.L. & Zachos J.C. 

2005a: Arctic dinoflagellate migrations mark the strongest Oli-

gocene glaciations. Geology 33, 709–712.

Van Simaeys S., Munsterman D. & Brinkhuis H. 2005b: Oligocene 

dinoflagellate cyst biostratigraphy of the southern North Sea Ba-

sin. Rev. of Palaeobotany and Palynology 134, 105–128.

Villa G., Fioroni C., Pea L., Bohaty S. & Persico D. 2008: Middle 

Eocene–late  Oligocene  climate  variability:  calcareous  nanno-

fossil response at Kerguelen Plateau, Site 748. Mar. Micropale­

ont. 69, 173–192.

Wade B.S. & Bown P.R. 2006: Calcareous nannofossils in extreme 

environments:  The  Messinian  Salinity  Crisis.  Polemi  Basin, 

 Cyprus.  Palaeogeogr. Palaeoclimatol. Palaeoecol. 233, 3–4, 

271–286. 

Wade B.S., Pearson P., Berggren W.A. & Pälike H. 2011: Review and 

revision of Cenozoic tropical planktonic foraminiferal biostra-

tigraphy and calibration to the geomagnetic polarity and astro-

nomical time scale. Earth–Sci. Rev. 104, 1–3, 111–142. 

von Benedek P.N. & Müller C. 1974: Nannoplankton – Phytoplank-

ton  –  Korrelation  im  Mittel-  und  Ober-Oligozän  von  NW 

Deutschland.  Neues Jahrb. Geol. Paläontol., Monatshefte  7, 

385–397.

Young J.R. 1998: Neogene. In: Bown P.R. (Ed.): Calcareous nanno-

fossil  biostratigraphy.  Kluwer Academic Publications,  Dor-

drecht, 225–265. 

Young J.R., Bown P.R. & Lees J.A. 2017: Nannotax3 website. Inter­

national Nannoplankton Association. URL: http://www. mikrotax.

org/Nannotax3.

Zachos  J.C.,  Pagani  M.,  Stone  L.,  Thomas  E.  &  Billups  K.  2001: 

Trends, rhythms, and aberrations in global climates 65 Ma to 

present. Science 292, 686–693.

background image

i

OLIGOCENE TRANSITION IN TRANSYLVANIAN BASIN REVEALED BY CALCAREOUS NANNOFOSSILS

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

a) Autochtonous calcareous nannofossils

Number of specimens / specie

Blackites sp.

7

Braarudosphaera bigelowii (Gran & Braarud, 1935) Deflandre, 1947

1677

Calcidiscus pataecus (Gartner, 1967) de Kaenel & Villa, 1996

2

Chiasmolithus altus (Bukry & Percival, 1971)

4

Coccolithus pelagicus (Wallich, 1877) Schiller, 1930

983

Coronocyclus sp. (Hay, Mohler & Wade, 1966)

26

Cyclicargolithus abisectus (Muller, 1970) Wise, 1973

452

Cyclicargolithus floridanus (Roth & Hay, in Hay et al., 1967) Bukry, 1971 

3441

Discoaster deflandrei (Bramlette & Riedel, 1954)

1

Helicosphaera euphratis (Haq, 1966)

21

Helicosphaera intermedia (Martini, 1965)

11

Helicosphaera recta (Haq, 1966) Jafar & Martini, 1975 

163

Helicosphaera sp.

9

Pontosphaera desueta (Müller, 1970) Perch-Nielsen, 1984

134

Pontosphaera cf. enormis (Locker, 1967) Perch-Nielsen, 1984

55

Pontosphaera multipora (Kamptner, 1948 ex Deflandre in Deflandre & Fert, 1954) Roth, 1970

1300

Pontosphaera pygmaea (Locker, 1967) Bystricka & Lehotayova, 1974

433

Pyrocyclus orangensis (Bukry, 1971) Backman, 1980

46

Reticulofenestra bisecta (Hay, Mohler & Wade, 1966) Roth, 1970

467

Reticulofenestra callida (Perch-Nielsen, 1971) Bybell, 1975

88

Reticulofenestra daviesii (Haq, 1968) Haq, 1971

199

Reticulofenestra dictyoda (Deflandre in Deflandre & Fert, 1954) Stradner in Stradner & Edwards, 1968 

46

Reticulofenestra lockeri (Müller, 1970)

476

Reticulofenestra minuta (Roth, 1970) 

1952

Reticulofenestra scissura (Hay, Mohler & Wade, 1966)

6

Reticulofenestra scrippsae (Bukry & Percival, 1971)

44

Reticulofenestra stavensis (Levin & Joerger, 1967) Varol, 1989

202

Reticulofenestra gr. 3-5 μm (Hay, Mohler & Wade, 1966)

563

Sphenolithus akropodus (de Kaenel & Villa, 1996)

29

Sphenolithus ciperoensis (Bramlette & Wilcoxon, 1967)

10

Sphenolithus dissimilis (Bukry & Percival, 1971)

1

Sphenolithus distentus (Martini, 1965) Bramlette & Wilcoxon, 1967

26

Sphenolithus moriformis (Bronnimann & Stradner, 1960) Bramlette & Wilcoxon, 1967

136

Sphenolithus predistentus (Bramlette & Wilcoxon, 1967)

80

Sphenolithus sp. (Deflandre in Grassé, 1952)

14

Thoracosphaera sp. (Kamptner, 1927)

10

Triquetrorhabdulus longus (Blaj & Young, 2010)

1

Zygrhablithus bijugatus (Deflandre in Deflandre &Fert, 1954) Deflandre, 1959

64

Total

13180

b) Reworked calcareous nannofossils
Calculites obscurus (Deflandre, 1959) Prins & Sissingh in Sissingh, 1977

3

Cyclagelosphaera reinhardtii (Perch-Nielsen, 1968) Romein, 1977

1

Cyclicargolithus luminis (Sullivan, 1965) Bukry, 1971

3

Neochiastozygus sp. (Perch-Nielsen, 1971)

1

Pontosphaera distincta (Bramlette & Sullivan, 1961) Roth & Thierstein, 1972

1

Prediscosphaera cretacea (Arkhangelsky, 1912) Gartner, 1968

3

Prinsius sp. (Hay & Mohler, 1967)

1

Rhabdosphaera sp. (Haeckel, 1894)

2

Sphenolithus obtusus (Bukry, 1971)

2

Toweius rotundus (Perch-Nielsen in Perch-Nielsen et al., 1978)

1

Watznaueria barnesiae (Black in Black & Barnes, 1959) Perch-Nielsen, 1968

9

Total

27

Supplementum

Table 1: List of calcareous nannofossils species present in the Fântânele Section together with their counts.

background image

ii

KALLANXHI , BĂLC , ĆORIĆ, SZÉKELY and FILIPESCU

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

Species versus their known 
palaeoecology

Palaeoenvironment
(eutrophic, 
mesotrophic, 
oligotrophic)

Type of nutrient t /
Trophic preferences

Temperature: 
warm, temperate, 
cold

Salinity:
brackish–hyposaline,
normal, hypersaline

Geological setting

Others

Braarudosphaera bigelowii Eutrophic

 (1, 7, 9, 

30, 41, 46, 59, 61, 
70, 73, 82, 85)

High-nutrient input 

(23, 65, 77)

Warmer 

(63)

Hyposaline–brackish 

(1, 3, 7, 9, 23, 28, 46, 
51, 60, 77, 81, 85)

Neritic 

(1, 7, 9)

 

Increased 
environmental stress 

(1, 7, 9, 73, 81, 85)

Terrigenous material 
influx 

(47, 81, 85)

Cool 

(85)

Hypersaline 

(83)

Shallow / increased 
proximity to the 
shore 

(23, 28, 51, 64, 

73, 81, 85)

Opportunistic / 
reduced competition 

(30, 46, 59, 61, 65, 
70, 73, 85)

Cold nutrient-rich 
waters (

60)

Absent in high-salinity 

(9)

Open-marine 

(30, 

46, 59, 61, 70)

Coastal areas 

(46)

Coccolithus pelagicus

Eutrophic 

(21, 57)

Cool high-nutrient 
input 

(2, 13, 34, 48, 

60, 81)

Cold 

(13, 35, 57, 67)

Hyposaline 

(2)

Open-ocean 

(2, 81, 

84)

Middle–high 
latitudes 

(11, 22, 43, 

48)

Oligotrophic 

(82)

High terrigenous 
material influx 

(57)

Temperate 

(55, 63, 

71, 75, 82)

Different salinity 
ranges 

(76)

Turbulence / mixing 
/ non-stratification 

(57, 74, 81)

Warm 

(22)

Upwelling 

(21, 32, 

33, 60, 81, 84)

Cyclicargolithus genus 

Eurytopic 

(77) 

Cy. floridanus

Eutrophic 

(22, 25, 

50, 81, 82)

No changes in 
temperature / no to 
reduced mixing in 
nutrient 

(81, 83, 85)

Temperate 

(22, 55, 

82, 85)

Open-marine 

(14, 

80, 81)

Mid-latitudes 

(20)

Eurytopic 

(78, 85)

No / reduced 
turbulence 

(81, 85)

Mesotrophic to 
eutrophic 

(85)

Decrease in 
abundance when 
influx of warm, low 
nutrient 

(53)

Temperate–cold 

(25)

No-temp affiliation 

(63)

Warm 

(69)

Discoaster spp.

Oligotrophic 

(14, 15, 

18, 19, 25, 26, 31, 
44, 45, 75)

Absent / rare in high 
fertility waters (

19, 

40)

Warm 

(14, 15, 18, 

19, 25, 26, 31, 44, 
45)

Deep-marine, stable 

(14, 15, 18, 19, 25, 
26, 31, 39, 44, 45, 
75)

Absent in marginal 
seas 

(17)

Table 2: Published references emphasising species known palaeoecological preferences and the findings from this study

Gran & Braarud 

(1935); 

2

 McIntyre & Bé (1967); 

Bukry (1971); 

Bukry & Percival (1971); 

5

 Bukry et al. (1971); 

Haq & Lipps (1971); 

7

 Takayama (1972);  

Okada & Honjo (1973); 

Bukry (1974); 

10 

Roth & Berger (1975);

 11 

Haq et al. (1977); 

12 

Schmidt (1978); 

13 

Okada & McIntyre (1979);  

14 

Haq (1980); 

15 

Lohmann & Carlson (1981); 

16 

Báldi-Beke (1984); 

17

 Perch-Nielsen (1985b); 

18 

Flores & Sierro (1987); 

19 

Chepstow-Lusty  

et al. (1989); 

20

 Firth (1989); 

21

 Rahman & Roth (1990); 

22 

Wei & Wise (1990); 

23 

Nagymarosy (1991); 

24 

Wei & Thierstein (1991); 

25 

Aubry 

(1992); 

26 

Chepstow-Lusty et al. (1992); 

27 

Krhovský et al. (1992); 

28 

Nagymarosy & Voronina (1992); 

29 

Pujos (1992); 

30 

Sissier et al. (1992);  

31

 Wei et al. (1992);

 32 

Giraudeau et al. (1993);

 33 

Giraudeau & Rogers (1994);

 34 

Roth (1994); 

35 

Winter et al. (1994); 

36 

Flores et al. (1995);

  

37 

Ziveri et al. (1995); 

38 

Fornaciari et al. (1996); 

39 

De Kaenel & Villa (1996); 

40 

Chapman & Chepstow-Lusty (1997); 

41

 Cunha & Shimabukuro 

(1997); 

42 

Flores et al. (1997); 

43 

Wells & Okada (1997); 

44 

Aubry (1998); 

45

Young (1998); 

46 

Peleo-Alampay et al. (1999); 

47

 Svábenická (1999); 

48 

Cachão & Moita (2000); 

49 

Kameo & Sato (2000); 

50

 Monechi et al. (2000); 

51 

Nagymarosy (2000); 

52 

Negri & Villa (2000); 

53 

Pagani

 

et al. 

(2000); 

54

 Takahashi & Okada (2000); 

55 

Oszczypko-Clowes (2001); 

56

 Bralower (2002); 

57 

 Geisen et al. (2002); 

58 

Kameo (2002); 

59

 Kelly et al. 

(2003); 

60

 Ćorić & Rögl (2004); 

61 

Eisenach & Kelly (2004); 

62 

Gibbs et al. (2004); 

63 

Persico & Villa (2004); 

64 

Van Simaeys et al. (2004);  

65 

Thierstein et al. (2004); 

66

Tremolada & Bralower (2004); 

67 

Ziveri et al. (2004);

 68

 Flores et al. (2005); 

69 

Melinte (2005); 

70 

Gamboa & 

Shimabukuro (2006); 

71 

Villa & Persico (2006); 

72 

Wade & Bown (2006); 

73 

Bartol et al. (2008); 

74 

Ćorić & Hohennegger (2008); 

75 

Villa et al. 

(2008); 

76 

Silva et al. (2008); 

77 

Narciso et al. (2010); 

78 

Shcherbinina (2010); 

79 

Garecka (2012); 

80 

Plancq et al. (2013); 

81 

Auer et al. (2014);

  

82 

Ozdínová & Sotak (2014); 

83

 Kallanxhi et al. (2016); 

84

 Holcová (2017); 

85

 present study. 

Note: some of the references from table 3 of Villa 

et al. (2008) are included here.

background image

iii

OLIGOCENE TRANSITION IN TRANSYLVANIAN BASIN REVEALED BY CALCAREOUS NANNOFOSSILS

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

Species versus their known 
palaeoecology

Palaeoenvironment
(eutrophic, 
mesotrophic, 
oligotrophic)

Type of nutrient t /
Trophic preferences

Temperature: 
warm, temperate, 
cold

Salinity:
brackish–hyposaline,
normal, hypersaline

Geological setting

Others

Helicosphaera spp.

Eutrophic 

(17, 72)

High-productivity 
waters 

(17, 29, 67, 

68, 69, 77)

Warm 

(5, 6, 52, 69, 

82)

Hyposaline–brackish 

(29, 68, 72, 77)

Shallow / 
hemipelagic / near 
continental 

(5, 6, 17, 

20, 27, 51, 67)

Oligotrophic 

(81)

High terrigenous 
nutrient influx 

(5, 

77)

Warm–temperate 

(17, 22, 67, 85

)

Normal to slightly 
increased salinity 

(85)

Upwelling 

(17, 37, 

67, 79, 85)

Pontosphaera spp.

Eutrophic 

(25, 85)

Nutrient mixing and 
sea surface 
turbulence 

(85)

Warm 

(64,79)

Tolerate slight salinity 
fluctuations 

(27, 28, 

79, 82)

Shallow/ near shore

 

(17, 20, 27, 28, 51, 
64, 79, 85)

Eurytopic 

(85)

Temperate–warm 

(85)

Hyposaline 

(64)

 

Stable marine 
conditions 

(69, 73, 

79)

Opportunistic 

(85)

Hypersaline 

(16, 73, 

79, 82)

Normal–hypersaline 

(85)

Pontosphaera multipora

Adapt to nutrient 
mixing and sea 
surface turbulence 

(85)

Warm 

(64)

Normal 

(28)

Shelf areas 

(17)

Opportunistic 

(85)

Temperate–warm 

(85)

Normal–hypersaline 

(85)

Shallow/ near shore 

(51, 85)

Pontosphaera pygmaea

Adapt to nutrient 
mixing and sea 
surface turbulence 

(85)

Warm 

(64)

Temperate–warm 

(85)

Normal–hypersaline 

(85)

Shallow/ near shore 

(51, 85)

Opportunistic 

(85)

Reticulofenestra genus

Eutrophic 

(52, 68, 

73)

Cold high-nutrient 
input 

(14, 49)

Eurytopic 

(78)

Reticulofenestra bisecta

Eutrophic 

(82, 85)

High-nutrient input 

(69, 85)

Warm 

(52, 69)

Neritic / near-
continental 

(27, 69)

High latitudes 

(11, 

20)

Warm–temperate 

(22)

Temperate

 (31, 

55,63, 71, 75, 82)

Temperate–cool 

(85)

Cold 

(51)

Reticulofenestra callida

Cold 

(22, 51)

Reticulofenestra daviesii

Cold 

(24)

Cool 

(31, 50, 63, 71, 

75)

Reticulofenestra lockeri

Eutrophic 

(51)

High-nutrient input 

(51, 79)

Cold 

(22, 51, 82)

Hypersaline 

(79)

Shallow 

(79)

Oligotrophic 

(82)

Reticulofenestra minuta

Eutrophic 

(14, 72, 

85)

Terrigenous 
high-nutrient input 

(14, 72, 81, 85)

Warmer 

(60, 72, 74)

Brackish to 
hypersaline 

(72)

Near-shore / shallow 
/ continental margin 

(5, 14, 27, 72, 81)

Better stratified 
column water / stable 

(60, 74)

More oligotrophic 

(60, 74)

Oscillations in 
nutrient 

(42, 43, 58, 

83)

Hyposaline 

(74)

Environmental stress 
/ instability 

(72, 81, 

84, 85)

High productivity 
environments 

(72, 

85)

Normal to hyposaline 

(85)

Opportunistic 
behaviour 

(72)

Small Reticulofenestra (<5) Eutrophic 

(58, 85)

High-nutrient input 

(8, 25, 36, 54, 85)

Environmental stress 
/ instability 

(84, 85)

Table 2 (continued)

background image

iv

KALLANXHI , BĂLC , ĆORIĆ, SZÉKELY and FILIPESCU

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

Species versus their known 
palaeoecology

Palaeoenvironment
(eutrophic, 
mesotrophic, 
oligotrophic)

Type of nutrient t /
Trophic preferences

Temperature: 
warm, temperate, 
cold

Salinity:
brackish–hyposaline,
normal, hypersaline

Geological setting

Others

Reticulofenestra scrippsae

Neritic + open-marine 

(4)

Sphenolithus genus

Oligotrophic 

(17, 

22,44, 62, 63)

Nutrient input 

(81)

Warm 

(17, 22, 38, 

44, 56, 63, 75)

Deep-marine 

(38, 

39)

Eutrophic 

(72)

Shallow, 
near-continental, 
stable 

(17, 72)

S. moriformis

Oligotrophic 

(62)

Warm 

(25, 31, 50, 

62, 66, 71, 75)

Near-shore 

(81)

Zygrhablithus bijugatus

Oligotrophic 

(22)

Warm 

(62, 64, 69)

Near-shore 

(27, 50, 

51, 69)

Eutrophic 

(66, 75)

Temperate 

(75)

Cool 

(66)

References

Aubry M.-P. 1992: Late Paleogene calcareous nannoplankton evolu-

tion:  a  tale  of  climatic  deterioration.  In:  Prothero  D.R.  & 

 Berggren  W.A.  (Eds.):  Eocene–Oligocene  climatic  and  biotic 

evolution. Princeton Univ. Press, 272–309.

Aubry M.-P. 1998: Early Paleogene calcareous nannoplankton evolu-

tion: a tale of climatic amelioration. In: Aubry M.–P., Lucas S., 

Berggren W.A. (Eds.): Late Paleocene and Early Eocene Clima-

tic  and  Biotic  Evolution.  Columbia Univ. Press,  New  York, 

 158–203.

Auer G., Piller W.E. & Harzhauser M 2014: High-resolution calca-

reous nannoplankton palaeoecology as a proxy for small-scale 

environmental  changes  in  the  Early  Miocene.  Mar. Micro­

paleont. 111, 53–65.

 

Báldi-Beke M. 1984: The nannoplankton of the Transdanubian Paleo-

gene  formations.  Geol. Hung.,  Ser. Paleontologica 43,  Inst. 

Geol. Hung., Budapest, 1–307.

Bartol M., Pavšič J., Dobnikar M. & Bernasconi S.M. 2008: Unusual 

Braarudosphaera bigelowii and Micrantholithus vesper enrich-

ment  in  the  Early  Miocene  sediments  from  the  Slovenian 

 Corridor, a seaway linking the Central Paratethys and the Medi-

terranean.  Palaeogeogr. Palaeoclimatol. Palaeoecol.  267,  77–

88.

Bralower T.J. 2002: Evidence of surface water oligotrophy during the 

Paleocene–Eocene  thermal  maximum:  nannofossil  assemblage 

data from Ocean Drilling Program Site 690, Maud Rise, Weddel 

Sea. Paleoceanogr. 17, 13.1–13.13.

Bukry  D.  1971:  Coccolith  stratigraphy  LEG  6.  Deep  Sea  Drilling 

Project. Washington, 965–1004. 

Bukry  D.  1974:  Coccoliths  as  paleosalinity  indicators:  evidence  

from  the  Black  Sea.  Amer. Assoc. Petrol. Geol., Memoir 20, 

303–327.

Bukry  D.  &  Percival  1971:  New  Tertiary  calcareous  nonnofossils: 

 Tulane Stud. Geol. Paleont., v. 8, no. 3, p. 123-146.

Bukry  D.,  Douglas  R.G.,  King  S.A.  &  Krasheninnikov  V.  1971: 

Planktonic  microfossil  biostratigraphy  of  the  north-western 

 Pacific Ocean. In: Heezen B. et al. (Eds.): Initial Reports of the 

Deep Sea Drilling Project 6, 1253–1300. 

Cachão M. & Moita M.T. 2000: Coccolithus pelagicus, a productivity 

proxy related to moderate fronts off Western Iberia. Mar. Micro­

paleont. 39, 131–155.

Chapman M. R & Chepstow-Lusty A. J. 1997: Late Pliocene climatic 

change and the global extinction of the discoasters: an indepen-

dent  assessment  using  oxygen  isotope  records.  Palaeogeogr.  

Palaeoclimatol. Palaeoecol. 134, 1–4, 109–125. 

Chepstow-Lusty A., Backman J. & Shackleton N. J. 1989: Compari-

son  of  Upper  Pliocene  Discoaster Abundance  Variations  from 

North Atlantic Sites 552, 607, 658, 659, and 662: Further Evi-

dence for Marine Plankton Responding to Orbital Forcing. Proc. 

of the Ocean Drill. Progr., Scientific Results 108, 121 – 141. 

Chepstow-Lusty A.,  Shackleton  N.  J.  &  Backman  J.  1992:  Upper 

Pliocene  Discoaster  abundance  variations  from  the  Atlantic, 

 Pacific and Indian Oceans: the significance of productivity pres-

sure at low latitudes. Memorie Sci. Geol. 43, 357 – 373.

Ćorić S. & Rögl F. 2004: Roggendorf-1 borehole, a key section for 

Lower Badenian transgressions and the stratigraphic position of 

the Grund Formation. Geol. Carpath. 55, 2, 165–178.

Ćorić S. & Hohennegger J. 2008: Quantitative analyses of calcareous 

nannoplankton  assemblages  from  the  Baden–Sooss  section 

(Middle Miocene of Vienna Basin, Austria). Geol. Carpath. 59, 

5, 447–460.

Cunha A.S & Shimabukuro S. 1997: Braarudosphaera blooms and 

anomalous  enrichments  of  Nannoconus:  evidence  from  the 

Turonian south Atlantic, Santos basin, Brazil. J. Nannoplankt. 

Res. 19, 1, 51–55.

Eisenach A.R. & Kelly D. C 2004: Recurrence of anomalous Braaru-

dosphaera chalks in early Oligocene sequences of the southwes-

tern Atlantic Ocean (DSDP Site 516). Geol. Soc. Am. 36, 5, 17.

Firth J. 1989: Eocene and Oligocene Calcareous Nannofossils from 

the Labrador Sea, ODP Leg 105. In: Srivastra S.P., Arthur M., 

Clement B. et al. (Eds.): Proc. of the Ocean Drill. Progr. Scient. 

Res. 105, 263–286. 

Flores J.A. & Sierro F.J. 1987: Calcareous plankton in the Tortonian–

Messinian  transition  series  of  the  Northwestern  edge  of  the 

 Guadalquivir basin. Abh. Geol. Bundesanst. 39, 67–84.

Flores J.A., Sierro F.J. & Raffi I. 1995: Evolution of the calcareous 

nannofossil assemblage as a response to the paleoceanographic 

changes in the eastern equatorial Pacific Ocean from 4 to 2 Ma 

(Leg 138, Sites 849 and 852). Proc. Ocean Drill. Program Sci. 

Res. 138, 163–176.

Flores J.A., Sierro F.S., Francés G., Vasquez A. & Zamarreno I. 1997: 

The last 100,000 years in the western Mediterranean Sea surface 

water  and  frontal  dynamics  as  revealed  by  coccolithophores. 

Mar. Micropaleont. 29, 351–366.

Table 2 (continued)

background image

v

OLIGOCENE TRANSITION IN TRANSYLVANIAN BASIN REVEALED BY CALCAREOUS NANNOFOSSILS

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

Flores J.-A., Sierro F.J., Filippelli G., Bárcena M., Pérez-Folgado M., 

Vásquez  A.  &  Utrilla  R.  2005:  Surface  water  dynamics  and 

 phytoplankton  communities  during  deposition  of  cyclic  late 

Messinian  sapropel  sequences  in  the  western  Mediterranean. 

Mar. Micropaleont. 56, 50

79.

Fornaciari  E.,  Di  Stefano  A.,  Rio  D.  &  Negri  A.  1996:  Middle 

 Miocene calcareous nannofossil biostratigraphy in the Mediter-

ranean region. Micropaleont. 42, 1, 37–63.

Gamboa  L.A.P.  &  Shimabukuro  S.  2006:  Oligocene  Braarudo-

sphaera-chalk in the South Atlantic Ocean, its origin and possi-

ble relation with the openning of the Drake Passage. VII Simpo­

sio Español de Estudios Polares ­ Programa, Granada.

Garecka M. 2012: Record of the changes in the Oligocene–Miocene 

sediments of the Menilite-Krosno series of the Skole Unit based 

on calcareous nannoplankton studies-biostratigraphy and palaeo-

geographical implications (Polish Outer Carpathians). Biuletyn 

Pañstwowego Instytutu Geologicznego 453, 1–22.

Geisen M., Billard C., Broerse A.T.C., Cros L., Probert I. & Young 

J.R. 2002: Life-cycle associations involving pairs of holococco-

lithophorid species: intraspecific variation or cryptic speciation? 

Eur. J. Phycol. 37, 531–550.

Gibbs S., Shackleton N.J. & Young J.R. 2004: Orbitally forced cli-

mate  signals  in  mid–Pliocene  nannofossil  assemblages.  Mar. 

Micropaleont. 51, 39–56.

Giraudeau  J.  &  Rogers  J.  1994:  Phytoplankton  biomass  and  sea- 

surface  temperature  estimates  from  sea-bed  distribution  of 

 nannofossils  and  planktonic  foraminifera  in  the  Benguela 

 upwelling system. Micropaleont. 40, 3, 275

285.

Giraudeau J., Monteiro P.M.S. & Nikodemus K. 1993: Distribution 

and  malformation  of  living  coccolithophores  in  the  northern 

Benguela upwelling system off Namibia. Mar. Micropaleont. 22, 

1–2, 93

110.

Gran H.H. & Braarud T. 1935: A Quantitative Study of the Phyto-

plankton in the Bay of Fundy and the Gulf of Maine (including 

Observations on Hydrography, Chemistry and Turbidity). Jour. 

of the Biological Board of Canada. 1, 5, 279-467. 

Haq  B.U.  &  Lipps  J.H.  1971:  Calcareous  Nannoplankton.  Proc. 

Ocean. Drill. Program Sci. Res. 8, 777–789. 

Haq B.U. 1980: Biogeographic history of Miocene calcareous nanno-

plankton and paleoceanography of the Atlantic Ocean. Micro­

paleontology 26, 4, 414–443. 

Haq B.U., Berggren W.A. & Van Couvering J.A. 1977: Corrected age 

of the Pliocene-Pleistocene boundary. Nature 269, 483

289.

Holcová  K.  2017:  Calcareous  nannoplankton  and  foraminiferal  re-

sponse to global Oligocene and Miocene climatic oscillations: 

a case study from the Western Carpathian segment of the Central 

Paratethys. Geol. Carpath. 68, 3, 207 – 228. 

de Kaenel E. & Villa G. 1996: Oligocene/Miocene calcareous nanno-

fossil biostratigraphy and paleoecology from the Iberia Abyssal 

Plain, Northeastern Atlantic. In: Whitmarsh R.B., Sawyer D.S., 

Klaus A. & Masson D.G. (Eds.): Proc. ODP Sci. Res. 149, 79–145.

Kallanxhi M.-E.; Ćorić S. & Koçiu A. 2016: Late Oligocene calcare-

ous nannofossils from Albanian-Thessalian intramontane basin 

(Bozdovec Section, Albania) – a quantitative approach. Studia 

UBB Geologia 60, 1, 5–20. 

Kameo  K.  2002:  Late  Pliocene  Caribbean  surface  water  dynamics 

and climatic changes based on calcareous nannofossil records. 

Palaeogeogr. Palaeoclimatol. Palaeoecol. 179, 211–226.

Kameo K. & Sato T. 2000: Biogeography of Neogene calcareous nan-

nofossils in the Caribbean and the eastern equatorial Pacific - 

floral response to the emergence of the Isthmus of Panama. Mar. 

Micropaleont. 39, 14, 210–218. 

Kelly D.C., Norris R.D. & Zachos J.C. 2003: Deciphering the pale-

oceanographic  significance  of  Early  Oligocene  Braarudos­

phaera chalks in the South Atlantic. Mar. Micropaleont. 49, 1–2, 

49–63.

Krhovský  J.,  Adamová  J.,  Hladíková  J.  &  Maslowská  H.  1992: 

Palaeo environmental  changes  across  the  Eocene/Oligocene 

boundary  in  the  Ždánice  and  Pouzdřany  Units  (Western  Car-

pathians,  Czechoslovakia):  The  long–term  trend  and  orbitally 

forced  changes  in  calcareous  nannofossil  assemblages.  In: 

 Hamršmíd  B.  &  Young  J.  (Eds.):  Nannoplankton Research. 

 Proceedings of Fourth INA Conference,  Prague,  1991,  Kni­

hovnička ZPN 14b, 2, 105–187.

Lohmann G.P. & Carlson J.J. 1981: Oceanographic significance of 

Pacific  late  Miocene  calcareous  nannoplankton.  Mar. Micro­

paleont. 6, 553

579. 

McIntyre A. & Bé A.W.H. 1967: Modern coccolithophoridae of the 

Atlantic  Ocean  –  I.  Placoliths  and  cyrtoliths.  Deep

­Sea Res. 

Oceanogr. Abstr. 14, 5, 561–597.

Melinte  M.  2005:  Oligocene  palaeoenvironmental  changes  in  the 

 Romanian  Carpathians,  revealed  by  calcareous  nannofossils. 

Studia Geologica Polonica Kraków 124, 341–352.

Monechi S., Buccianti A. & Gardin S. 2000: Biotic signals from nan-

noflora across the iridium anomaly in the upper Eocene of the 

Massignano  section:  evidence  from  statistical  analysis.  Mar. 

 Micropaleont. 39, 219–237.

Nagymarosy A. 1991: The response of the calcareous nannoplankton 

to the Early Oligocene separation of the Paratethys. 4

th

 Interna­

tional Nannoplankton Assoc. Conf. Abstr.,  Prague  1991.  INA 

Newsletter 13, 2, 62–63.

Nagymarosy  A.  2000:  Lower  Oligocene  nannoplankton  in  anoxic 

 deposits  of  the  central  Paratethys.  8th International Nanno­

plankton Assoc. Conf.,  Bremen.  J. Nannoplankton Res. 22, 

 128–129.

Nagymarosy A. & Voronina A. A. 1992: Calcareous nannoplankton 

from  the  Lower  Maikopian  beds  (Early  Oligocene,  Union  of 

 Independent  States).  In:  Hamršmíd  B.  &  Young  J.R.  (Eds.): 

 Nannoplankton Res. Proc. of Fourth INA Conference,  Prague 

1991, Knihovnička ZPN 14b, 2, 187–221.

Narciso Á, Flores J.-A., Cachão M., Sierro F.J, Colmenero-Hidalgo 

E., Piva A. & Asioli A. 2010: Sea surface dynamics and cocco-

lithophore  behaviour  during  sapropel  deposition  of  Marine 

 Isotope Stages 7, 6 and 5 in Western Adriatic sea. Rev. Española 

de Micropaleont. 42, 3, 345

358.

Negri A.  &  Villa  G.  2000:  Calcareous  nannofossil  biostratigraphy, 

biochronology  and  paleoecology  at  the  Tortonian/Messinian 

boundary  of  the  Faneromeni  section  (Crete).Palaeogeogr. 

 Palaeoclimatol.  Palaeoecol. 156, 3, 195-209.

Okada H. & McIntyre A. 1979: Seasonal distribution of the modern 

Coccolithophores  in  the  western  North  Atlantic  Ocean.  Mar. 

Biol. 54, 4, 319–328. 

Okada H. & Honjo S. 1973: The distribution of oceanic coccolitho-

phorids in the Pacific. Deep–Sea Res. 20, 355–374.

Oszczypko-Clowes M. 2001: The nannofossils biostratigraphy of the 

youngest deposits of the Magura Nappe (east of Skawa River, 

Polish Flysch Carpathians) and their palaeoenvironmental con-

ditions. Ann. Soc. Geologorum Poloniae 71, 139–188.

Ozdínová S. 

Soták J. 2014: Oligocene–Early Miocene planktonic 

microbiostratigraphy  and  paleoenvironments  of  the  South  

Slovakian  Basin  (Lučenec  Depression).  Geol. Carpath. 65, 

 451–470.

Pagani M., Arthur M.A. & Freeman K.H. 2000: Variations in Miocene 

phytoplankton growth rates in the southwest Atlantic: evidence 

for changes in ocean circulation. Paleoceanogr. 15, 486–496.

Peleo-Alampay A.M., Mead G.A. & Wei W. 1999: Unusual Oligo-

cene Braarudosphaera-rich layers of the South Atlantic and their 

paleoceanographic  implications.  J. Nannoplankton Res. 21, 1, 

17–26.

Perch–Nielsen K. 1985b: Cenozoic calcareous nannofossils. In: Bolli 

H.M., Saunders J.B. & Perch–Nielsen K. (Eds.): Plankton stra-

tigraphy. Cambridge University Press, 427–554.

background image

vi

KALLANXHI , BĂLC , ĆORIĆ, SZÉKELY and FILIPESCU

GEOLOGICA CARPATHICA

, 2018, 69, 3, 264–282

Tremolada F. & Bralower T.J. 2004: Nannofossil assemblage fluctua-

tions during the Paleocene–Eocene Thermal Maximum at Sites 

213  (Indian  Ocean)  and  401  (North  Atlantic  Ocean):  palae-

oceanographic implications. Mar. Micropaleont. 52, 107–116.

 

Van  Simaeys  S.,  De  Mann  E.,  Vandenberghe  N.,  Brinkhuis  H.  & 

Steurbaut 2004: Stratigraphic and paleoenvironmental analysis 

of the Rupelian–Chattian transition in the type region: evidence 

from dinoflagellate cysts, foraminifera and calcareous nannofos-

sils. Palaeogeogr. Palaeoclimatol. Palaeoecol. 208, 31–58.

Villa  G.  &  Persico  D.  2006:  Late  Oligocene  climatic  changes: 

 evidence  from  calcareous  nannofossils  at  Kerguelen  Plateau  

Site  748  (Southern  Ocean).  Palaeogeogr. Palaeoclimatol. 

 Palaeoecol.  231, 110–119

Villa G., Fioroni C., Pea L., Bohaty S. & Persico D. 2008: Middle 

Eocene–late Oligocene climate variability: calcareous nannofos-

sil response at Kerguelen Plateau, Site 748. Mar. Micropaleont. 

69, 173–192.

Wade B.S. & Bown P.R. 2006: Calcareous nannofossils in extreme en-

vironments: The Messinian Salinity Crisis. Polemi Basin,  Cyprus. 

Palaeogeogr. Palaeoclimatol. Palaeoecol. 233, 3–4, 271–286. 

Wei W.  & Wise  S.W.  Jr.  1990:  Biogeographic  gradients  of  middle 

Eocene–Oligocene  calcareous  nannoplankton  in  the  South 

 Atlantic  Ocean.  Palaeogeogr. Palaeoclimatol. Palaeoecol.  79, 

1–2, 29-61.

Wei W. & Thierstein H.R. 1991: Upper Cretaceous and Cenozoic cal-

careous nannofossils of the Kerguelen Plateau (southern Indian 

Ocean) and Prydz Bay (East Antarctica). In: Barron J.A., Larsen 

B. et al. (Eds.): Proc. ODP. Sci. Res. 119, 467–493.

Wei W., Villa G. & Wise S.W. Jr. 1992: Paleoceanographic implica-

tions of Eocene–Oligocene calcareous nannofossils from Sites 

711 and 748 in the Indian Ocean. In: Wise Jr. S.W., Schlich R. et 

al. (Eds.): Proc. ODP. Sci. Res. 120, 979–999.

Wells  P.  &  Okada  H.  1997:  Response  of  nannoplankton  to  major 

changes in sea surface temperature and movements of hydrolo-

gical fronts over site DSDP 594 (south Chatham Rise, southeas-

tern New Zealand), during the last 130 kyr. Mar. Micropalaeont. 

32, 341–363.

Winter A., Jordan R. & Roth P. 1994: Biogeography of living Cocco-

lithophores in ocean waters. In: Winter A. & Siesser W. (Eds.): 

Coccolithophores.  Cambridge University Press,  Cambridge, 

13–37.

Young  J.R.  1998:  Neogene.  In:  Bown  P.R.  (Ed.):  Calcareous 

 nannofossil  biostratigraphy.  Kluwer Academic Publications

Dordrecht, 225–265

Ziveri P., Thunell R.C. & Rio D. 1995: Export production of cocco-

lithophores  in  an  upwelling  region:  Results  from  San-Pedro 

 Basin, Southern California Borderlands. Mar. Micropaleont. 24, 

335–358.

Ziveri P., Baumann K.H., Böckel B., Bollmann J. & Young J.R. 2004: 

Biogeography  of  selected  Holocene  coccoliths  in  the Atlantic 

Ocean.  In:  Thierstein  H.R.  &  Young  J.R.  (Eds.):  Cocco-

lithophores:  from  Molecular  Processes  to  Global  Impact. 

 Springer, 403–428.

Persico D. & Villa G. 2004: Eocene–Oligocene calcareous nannofos-

sils from Maud Rise and Kerguelen Plateau /Antarctica): palaeo-

ecological  and  paleoceanographic  implications.  Mar. Micro­

paleont. 52, 153–179.

 

Plancq J., Mattioli E., Henderiks J. & Grossi V. 2013: Global shifts in 

Noelaerhabdaceae assemblages during the late Oligocene–early 

Miocene. 

Mar. Micropaleont. 103, 40–50.

Pujos A. 1992: Calcareous nannofossils of Plio-Pleistocene sediments 

from the Northwestern margin of tropical Africa. In: Summer-

hayes C.P., Prell W.L. & Emeis K.C. (Eds.): Upwelling Systems: 

Evolution  since  the  Early  Miocene.  Geol. Soc. London Spec. 

Publ. 64, 343–356.

Rahman A. & Roth P.H. 1990: Late Neogene paleoceanography and 

paleoclimatology of the Golf of Aden region based on calcareous 

nannofossils. Paleooceanogr. 5, 1, 91–107. 

Roth P.H. 1994: Distribution of coccoliths in oceanic sediments. In: 

Winter A. & Siesser W.G (Eds.): Coccolithophores. Cambridge 

University Press, Cambridge, 199–218.

Roth P.H. & Berger W.H. 1975: Distribution and dissolution of cocco-

liths in the south and central Pacific. In: Sliter W.V., Bé A.W.H. 

&  Berger  W.H.  (Eds.):  Dissolution  of  Deep-Sea  Carbonate. 

Cushman Foundation Foraminiferal Research, Special Publica­

tion 87–113.

Schmidt  R.R.  1978:  Calcareous  nannoplankton  from  the  western 

North  Atlantic,  DSDP  Leg  44.  In:  Benson  W.E.,  Sheridan  

R.E.,  Pastouret  L.,  Enos  P.,  Freeman  T.,  Murdmaa  I.O.,  

Worstell P. (Eds.). Initial Rep. of the Deep Sea Drill. Proj. XLIV, 

 703–729.

Siesser  W.G.,  Bralower  T.J.  &  De  Carlo  E.H.  1992:  Mid-Tertiary 

Braarudosphaera-rich sediments on the Exmouth Plateau. Proc. 

Ocean Drill. Program Sci. Res. 122, 653–663.

Silva  A.,  Palma  S.  &  Moita  M.T  2008:  Coccolithophores  in  the 

 upwelling waters of Portugal: four years of weekly distribution 

in Lisbon bay. Cont. Shelf Res. 28, 18, 2601–2613.

Shcherbinina K. 2010: Response of early Paleogene nannofossils to 

periodically  increased  nutrient  availability  in  the  NE  Peri-

Tethys. Geophys. Res. Abstr. 12, EGU2010-13597.

Švábenická L.  1999:  Braarudosphaera-rich sediments in the Turo-

nian  of  the  Bohemian  Cretaceous  Basin,  Czech  Republic. 

 Cretaceous Res. 20, 6, 773–782.

Takahashi K. & Okada H. 2000: The paleoceanography for the last 

30,000  years  in  the  southeastern  equatorial  Indian  Ocean  by 

means  of  calcareous  nannofossils.  Mar. Micropaleont. 40, 

 83–103.

Takayama T. 1972: A note on the distribution of Braarudosphaera 

bigelowii  (Gran  and  Braarud)  Deflandre  in  the  Bottom  Sedi-

ments  of  Sendai  Bay,  Japan.  Trans. Proc. Palaeontol.  87, 

 429–435.

Thierstein H.R., Cortés M. & Haidar A.T. 2004: Plankton community 

behaviour  on  ecological  and  evolutionary  time-scales:  when 

models  confront  evidence.  In:  Thierstein  H.R.  &  Young  J.R. 

(Eds.):  Coccolithophores.  Springer,  Berlin,  Heidelberg,  

455–479