background image

www.geologicacarpathica.sk

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

, APRIL 2013, 64, 2, 117—132                                                              doi: 10.2478/geoca-2013-0008

Introduction

During the last decades, the Upper Cretaceous deposits of the
Eastern Carpathian flysch in Romania were micropaleontolog-
ically studied by Neagu (1970, 1990), Neagu et al. (1992), Ion
et al. (1995), Melinte & Bubík (2005), Melinte et al. (2007),
Bojar et al. (2009), Bindiu & Filipescu (2011), and Cetean et
al.  (2011).  The  Late  Santonian  to  Late  Campanian  interval
was reported as a period of major sea-level fluctuations in the
Tethyan area (Lüning et al. 1998; Li et al. 2000; Cetean et al.
2011) and therefore it offers a high potential for identification
of  stratigraphic  events.  This  offered  us  a  reason  to  look  for
new stratigraphic correlation criteria by examining the relation-
ship  between  micropaleontological  assemblages  and  paleo-
environments in the northern part of the Eastern Carpathians.

The Tarcău Nappe (Joja 1954) of the northern Moldavides

(Săndulescu  1984)  exposes  Upper  Cretaceous  deposits
throughout  a  relatively  large  area  between  the  Suceava  and
Dâmbovi a Valleys (Mutihac & Ionesi 1974). This study fo-
cuses on a representative continuous section of Upper Creta-
ceous  bathyal  deposits  cropping  out  along  the  Suceava
Valley (N 47.87150°, E 25.39642° – Fig. 1) in order to es-
tablish the biostratigraphy and to reconstruct the paleoenvi-
ronmental  settings  based  on  foraminifera  and  calcareous
nannoplankton assemblages.

Biostratigraphy and paleoenvironment of the Upper

Cretaceous deposits in the northern Tarcău Nappe

(Eastern Carpathians) based on foraminifera and

calcareous nannoplankton

RALUCA BINDIU

1

, SORIN FILIPESCU

1

 and RAMONA BĂLC

2

1

Babe -Bolyai University, Faculty of Biology and Geology, Department of Geology, Mihail Kogălniceanu Street 1, 400084 Cluj-Napoca,

Romania;   sorin.filipescu@ubbcluj.ro;  bindiuraluca@gmail.com

2

Babe -Bolyai University, Faculty of Environmental Science and Engineering, Fântânele Street 30 , 400294 Cluj-Napoca, Romania;

ramona.balc@ubbcluj.ro

(Manuscript received July 2, 2012; accepted in revised form December 11, 2012)

Abstract: Late Cretaceous foraminiferal and calcareous nannoplankton assemblages from the northern part of the Tarcău
Nappe, Hangu Formation in the northern Eastern Carpathians are documented in order to reconstruct paleoenvironmental
settings and biostratigraphy. The foraminiferal assemblages are dominated by flysch-type agglutinated taxa suggesting
bathyal environments, close to the calcite compensation depth (CCD), and mesotrophic to oligotrophic conditions. The
morphogroup analyses display variations in tubular and infaunal morphotypes suggesting different levels of oxygenation
and seafloor disturbance caused by currents. Reddish hemipelagites containing only agglutinated foraminifera (dominant
infaunal  forms)  occurring  in  the  middle  part  of  the  section  suggest  an  increase  of  water  depth  and  changes  in  redox
conditions. Based on foraminifera, the deposits were assigned to planktonic Globotruncana ventricosa and agglutinated
Caudammina gigantea Zones. The first occurrence of Uniplanarius trifidus and last occurrence of Reinhardtites anthophorus
demonstrate the presence of Late Campanian UC15

c

TP

—UC16/CC21—CC23 calcareous nannoplankton Zones. Foramin-

iferal and nannofossil assemblages in the red beds have a high potential for stratigraphic correlation on a regional scale.

Key  words:  Eastern  Carpathians,  paleoecology,  biostratigraphy,  morphogroup  analysis,  red  beds,  calcareous
nannoplankton, agglutinated foraminifera.

Material and methods

The  studied  section  is  part  of  the  Hangu  Formation

(Atanasiu 1939, 1943; Juravle 2007) and consists of medium-
grained  siliciclastic  turbidites  with  T

b-c

  (in  the  lower  part  of

the  section)  and  T

c-e

  divisions  of  Bouma  sequence  (Bouma

1962);  very  fine-grained  hemipelagites  occur  in  the  middle
and  upper  part  of  the  section.  Twenty  one  samples  for  fora-
minifera  and  twenty  three  for  calcareous  nannofossils  were
collected from the fine-grained intercalations of the turbiditic
sequence (Fig. 2). Sediment samples were processed by stan-
dard  micropaleontological  methods  and  more  than  300  fora-
minifera  were  picked  from  the  > 63 µm  fraction.  Primary
identification  was  done  under  the  stereomicroscope,  while
several  specimens  were  examined  in  detail  with  a  scanning
electron  microscope.  Paleoecological  methods  included  the
analysis of agglutinated foraminiferal morphogroups (Nagy et
al.  1995;  Van  der  Akker  et  al.  2000;  Kaminski  &  Gradstein
2005; Cetean et al. 2011; Murray et al. 2011; Setoyama et al.
2011)  and  the  diversity  analysis  (Fisher  et  al.  1943;  Murray
2006). The lithological log was drawn using the StratDraw ap-
plication  (Hoelzel  2004),  the  abundance  graphics  with  Gpal-
Win (Goeury 1997) and the diversity was calculated using the
PAST-Paleontological  Statistics  (Ryan  et  al.  1995).  Tubular
species were counted as one individual because fragmentation

background image

118

BINDIU, FILIPESCU and BĂLC

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA, 2013, 64, 2, 117—132

Fig. 1.

 Location 

of 

the 

investigated 

sections. 

1

 –

 Quaternary, 

2

 –

 Miocene, 

3

 –

 Oligocene, 

4

 –

 E

ocene, 

5

 –

 Paleocene—Eocene, 

– 

Upper 

Cretaceous—Paleocene, 

7

 –

 undivided 

Creta-

ceous, 

8

 –

 Lower 

Cretaceous, 

9

 –

 Triassic, 

10 

– 

Upper 

Proterozoic—Paleozoic, 

11

 –

 front 

of 

the 

nappes 

thrusting,

  1

2

 –

 faults, 

13

 –

 anticline 

(symmetrical, 

overturned), 

14

 –

 syncline

(symmetrical, 

overturned), 

15 

– 

location 

of 

the 

investigated 

section 

(modified 

after 

the 

Geol

ogical 

Map 

of 

Romania, 

1

:200,000, 

Rădăui 

sheet;

 Joja 

et 

al. 

1968).

background image

119

BIOSTRATIGRAPHY AND PALEOENVIRONMENT OF THE UPPER CRETACEOUS DEPOSITS (E CARPATHIANS)

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA, 2013, 64, 2, 117—132

Fig. 2. Sedimentary log and biostratigraphy of the Suceava section.

(mostly  observed  on  relatively  rare  Rhizammina  individuals)
was considered to have a low influence on the counting. Bio-
stratigraphical  interpretations  are  based  on  the  agglutinated
foraminiferal  zonation  of  Cetean  et  al.  (2011)  for  the  Roma-
nian Eastern Carpathians. Additional information was provided
by the planktonic foraminifera and calcareous nannoplankton.

The samples studied for calcareous nannofossils were pro-

cessed  using  the  gravity  settling  technique  (Bown  &  Young
1998).  On  every  smear  slide  a  minimum  of  300  specimens
were counted. 1000 fields of view (FOV) were examined from
each sample in order to observe biostratigraphical index taxa
and  rare  species.  The  individual  abundance  of  the  observed
taxa was assessed as follows: R – rare:  < 1 specimen per  > 50
fields of view (FOV); F – few: 1 specimen per 2—50 FOV;
C – common: 1 to 10 specimens per FOV; A – abundant:

> 10  specimens  per  FOV.  Preservation
of nannofossils was put into the follow-
ing  categories:  M  –  moderate  (over-
growth  and  etching  are  present  but
the  specimens  are  easily  identifiable),
P  –  poor  (overgrowth  and  etching  is
intensive  and  making  identification  of
some  specimens  difficult).  Relative
abundance of nannofossils in each sam-
ple: M – moderate (1—5 specimens per
FOV),  L  –  low  ( < 1  specimen  per
FOV). Zones defined by Burnett (1998)
correlated  with  CC  Zones  (Sissingh
1977;  Perch-Nielsen  1985)  were  used
for biostratigraphic zonation. The taxa
were  studied  at  magnifications  of
×1000, under a Zeiss Axiolab A light
microscope  and  the  photographs  were
captured with a digital microscopy cam-
era  AxioCam  ERc5s.  All  the  identified
taxa are listed in the Appendices 1, 2.

Results

Types of foraminiferal assemblages

Most samples (except for samples 12

and  18)  are  rich  in  foraminifera  (Ta-
ble 1) and the preservation of the indi-
viduals varies from moderate to good.

Two  different  assemblages  of  fora-

minifera  have  been  identified  in  the
Suceava section:

 Assemblage A, consisting mostly of

agglutinated taxa (60—90 % – Nothia,
BathysiphonHyperamminaPsammo-
sphaera
Ammodiscus    Fig. 4)  and
subordinately 

calcareous 

benthics

(1—5 %  –  Eponides,  Chrysalogonium)
and  planktonics  (Globotruncana  –  es-
pecially  in  samples  nos. 4  and  11;
Fig. 6) was identified in the basal part of
the section (samples 1—14).

 Assemblage B, consisting mostly of agglutinated benthics

and  rare  calcareous  benthics;  this  is  preserved  in  reddish
claystones (red beds) located in the middle part of the section
and greyish claystones in its upper part (samples 15—23). The
following  agglutinated  genera  are  present:  Bathysiphon,
Nothia,  Rhabdammina,  Glomospira,  Paratrochamminoides,
Recurvoides,  Karrerullina,  Caudammina  all  having  normal
sizes (Fig. 5).

Foraminiferal morphogroups

M1  morphogroup  (tubular  forms  represented  mainly  by

specimens  of  Nothia,  Bathysiphon  and  Rhabdammina)  is
present  in  all  samples  and  represents  more  than  70 %  of  the
assemblage in the basal and upper part of the section.

background image

120

BINDIU, FILIPESCU and BĂLC

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA, 2013, 64, 2, 117—132

Table 1: Distribution of foraminifera in the examined samples. R – rare, 1—3 specimens; F – frequent, 4—9 specimens; C – common,
10—29 specimens; A – abundant, 30 or more specimens.

Lithostratigraphic unit 

Hangu Formation 

Stage 

Upper Campanian 

Planktonic foraminiferal Zone 

Globotruncana ventricosa 

 

Agglutinated foraminiferal Zone 

 

 

Caudammina gigantea 

Sample 

1 2 3 4 5 6 7 8  9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 

Agglutinated foraminifera 
Ammobaculites sp. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Ammodiscus cretaceus 

R  F C R F R F          R R    F C    F R R F R 

Ammodiscus glabratus 

    R 

R    R  R R  R R        R  

Ammodiscus peruvianus 

R R R R R R F  F  F  R  R    F  R  R  F  F    F  R    R  R 

Ammodiscus tenuissimus               

   F R      R    F R    F R R F C    F    R    R 

Ammosphaeroidina pseudopauciloculata 

  R F F F F F C R    R    C R    F  C    F  F  F  R C 

Arthrodendron grandis 

   

 

   R   R 

F   R       

Bathysiphon sp. 

C A A C C A A A C  C C    A C A C A    C C C A A 

Caudammina ovula 

  R R R F  F R R    R  R    C  R  R  F  F    C  R    R  R 

Caudammina ovuloides 

   R  R              R R  R F  R R      

Caudammina gigantea 

                    F R R      R  F 

Conglophragmium irregularis 

   F             F F  F C  R F R 

R  

Cribrostomoides subglobosus 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Cribrostomoides sp.          

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Glomospira charoides 

       

R     R   F       

Glomospira gordialis 

  

F         F       

Glomospira irregularis 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Glomospira serpens 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Glomospira sp. 

      R          R R 

R R F  R R 

R  R 

Haplophragmoides kirki                         

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Hormosina trinitatensis 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Hormosina velascoensis 

 R      F F F    C R    R F    F C    R R       

Hormosinella distans 

       R  R R  R R  R F  R R 

R    

Hyperammina dilatata 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Hyperammina elongata 

F    R R R R R R  R   

 

  F    R  R  F    R  R  R    R 

Hyperammina granulosa 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Hyperammina rugosa 

R      F R R R    C F    C C F C C    C C R F R 

Hyperammina sp. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Kalamopsis grzybowski 

       R  R      R    R  R  F R R 

Karrerulina conversa 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Karrerulina horrida 

 R 

C F C    A  R A A  A  C R R 

Karrerulina sp. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Lituotuba lituiformis 

R      R 

R              R R  R  R R  

Nothia excelsa  

A A A A A A A A  A  A  A    A  A  A  A  A    A  A  A  A  A 

Nothia latissima 

C C C R R R C C  C  R  R    R  R      R    R  R  R  R   

Nothia robusta 

 R  R  R                     F        R R   

Paratrochamminoides gorayskii 

   

            R       

Paratrochamminoides heteromorphus 

A  R      R R      R    F C R F F    F F R R R 

Paratrochamminoides mitratus        

          R      R    F  R R 

R R  

Paratrochamminoides olszewskii 

R  R                R    R  F  R    

Psammosiphonella cilindrica 

    F C C C C C  A  A  F    C  C  F  F  F    C  C  R  R   

Psammosiphonella discreta 

      R  R          R      R      R  R 

Psammosphaera fusca                 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Psammosphaera irregularis 

C C F F C C F C    C  F    F  F  F  F  C    F  F  C  R  R 

Rectoprotomarssonella rugosa 

     

 

R     R  F   F   R 

Recurvoides anormis 

  F      C R C C R  C C    A C F A A    A C R F R 

Recurvoides sp

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Reophax duplex 

R R    R R R    F    R  R      R    F  F    R  R  R     

Reophax globosus 

R R  R F         R F    F F R F F    R F F     

Reophax pilulifer 

       

R  R 

R     R   R     

Reophax subfusiformis 

   F 

R      R            R      R R  R  

Reophax sp. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Rhabdammina linearis 

F R R F   R R   R R      F R R F R    R R R R R 

Rhabdammina sp. 

F          F    A        A 

C C 

Rhizammina sp. 

C C C R      C A   

  F      A  R  C  A    C  A  A  A  C 

Rzehakina epigona 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Rzehakina lata 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Saccammina grzybowski 

F F 

R  R      R  R F R  F    R    R 

Saccammina placenta 

  R F C F F C C  F  C  F    F  F  R  F  A    R  F  R  R  R 

Spiroplectammina sp. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Spiroplectinella dentata 

     R     R      R    F  R  F R R 

Subreophax pseudoscalaris 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Subreophax scalaris 

   R  R 

R  R R  R R    R  R R    R 

Trochamminoides dubius 

                      R R  R C  R      R 

Trochamminoides proteus 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Trochamminoides subcoronatus 

    R                  R F  R F    R 

Trochamminoides variolarius 

         F F A          F F    C C    F C F R F 

 

Continued on the next page.

background image

121

BIOSTRATIGRAPHY AND PALEOENVIRONMENT OF THE UPPER CRETACEOUS DEPOSITS (E CARPATHIANS)

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA, 2013, 64, 2, 117—132

A decrease in the relative abundance of M1 and an increase

of  M4b  (infaunal  forms  of  Karrerulina,  Reophax,  Sub-
reophax
) were observed in the red beds. The other morpho-
groups  are  present  in  relatively  low  proportions,  never
dominate  the  assemblages  and  are  relatively  uniformly  dis-
tributed along the section (Fig. 3).

Diversity of foraminifera

The  diversity  of  benthic  foraminiferal  species  is  highly

variable along the studied section (Fig. 3). The high relative
abundance of tubular forms can be correlated with low val-
ues  of  the  alpha  index.  The  diversity  increases  towards  the

Table 1: Continued.

Lithostratigraphic unit 

Hangu Formation 

Stage 

Upper Campanian 

Planktonic foraminifera Zone 

Globotruncana ventricosa 

 

Agglutinated foraminifera Zone 

 

 

Caudammina gigantea 

Sample 

1 2 3 4 5 6 7 8  9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 

Calcareous benthic foraminifera 
Chrysalogonium elongatum 

      

  R 

F    R        R 

Cibicidoides velascoensis 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Eponides praemegastomus 

         F F R F R F    F F R    F    R R       

Stillostomella sp

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Planktonic foraminifera 
Contusotruncana fornicata 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Globotruncana angulata 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Globotruncana arca 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Globotruncana bulloides 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Globotrunana concavata 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Globotruncana elevata 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Globotruncana orientalis 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Globotruncana stuartiformis 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Globotruncana ventricosa 

 

  

F  R             

Globotruncana sp. 

   

 

F                   

 

Fig. 3. Agglutinated foraminifera morphotypes (M1 – tubular; M2a – globular; M2b – rounded trochospiral and streptospiral/planconvex
trochospiral;  M2c  –  elongate  keeled;  M3a  –  flattened  trochospiral/flattened  planispiral  and  streptospiral;  M3c  –  flattened  streptospiral;
M4a – rounded planispiral; M4b – elongate subcylindrical/elongate tapered), planktonic foraminifera, calcareous benthic foraminifera,
diversity (Fisher alpha), and relative abundance (% of the assemblage) of two nannofosil taxa Watznaueria barnesiae and Micula staurophora.

background image

122

BINDIU, FILIPESCU and BĂLC

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA, 2013, 64, 2, 117—132

Fig. 4. Agglutinated foraminifera from the Suceava Valley section. 1 – Nothia excelsa (Grzybowski, 1898) emend. Geroch & Kaminski,
1992; Sample 2. 2 – Nothia excelsa (Grzybowski, 1898) emend. Geroch & Kaminski, 1992; Sample 6. 3 – Nothia excelsa (Grzybowski,
1898) emend. Geroch & Kaminski, 1992; Sample 13. 4 – Rhizammina indivisa Brady, 1884; Sample 5. – Rhizammina sp.; Sample 11.
6 – Reophax globosus Sliter, 1968; Sample 13. 7, 8 – Subreophax scalaris (Grzybowski, 1896); Sample 6. 9, 10 – Hormosina velascoensis
(Cushman, 1926); Sample 4. 11 – Saccammina placenta (Grzybowski, 1898) emend. Geroch, 1960; Sample 11. 12 – Psammosphaera
irregularis
 (Grzybowski, 1896) emend. Liszka & Liszkowa, 1981; Sample 4. 13 – Caudammina ovula (Grzybowski, 1896); Sample 2.

background image

123

BIOSTRATIGRAPHY AND PALEOENVIRONMENT OF THE UPPER CRETACEOUS DEPOSITS (E CARPATHIANS)

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA, 2013, 64, 2, 117—132

Fig. 5. Agglutinated foraminifera from the Suceava Valley section. 1 – Ammodiscus cretaceus (Reuss, 1845); Sample 2. 2 – Ammodiscus
peruvianus
 Berry, 1928; Sample 13. 3 – Glomospira gordialis (Jones & Parker, 1860); Sample 22. – Glomospira irregularis (Grzybowski,
1898); Sample 22. 5, 6 – Spiroplectinella dentata (Alth, 1850); Sample 4. 7 – Recurvoides sp.; Sample 3. 8, 9 – Recurvoides anormis
Mjatliuk, 1970; Sample 16.  10  –  Portatrochammina profunda Kender,  Kaminski  &  Jones, 2007; Sample 22.  11  – Haplophragmoides
sp. 1.; Sample 22. 12 – Haplophragmoides sp. 2.; Sample 23.

background image

124

BINDIU, FILIPESCU and BĂLC

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA, 2013, 64, 2, 117—132

Fig. 6. Planktonic foraminifera from the Suceava Valley section. 1—4 – Globotruncana ventricosa White, 1928; Sample 4 (1, 2 – umbilical
view; 3, 4; spiral view); 5, 6 – Globotruncanita elevata (Brotzen, 1934), spiral view; Sample 11.

middle and upper part of the section and reaches a maximum
in  the  red  shales  containing  only  deep-water  agglutinated
foraminifera.

In  the  Upper  Campanian  red  beds  (middle  part  of  the  sec-

tion – Fig. 2) the only observed micropaleontological assem-
blage consists of agglutinated foraminifera. Their diversity is
moderate,  but  higher  than  throughout  the  rest  of  the  section;
the  epibenthic  and  inbenthic  morphotypes  are  abundant  and
trace fossils are present.

Calcareous nannofossils

The preservation of the nannofossils is moderate to poor in

most analysed samples. It is very poor only in the upper part
of the section.  The assemblage is characterized by a moderate
to  low  abundance  (Table 2).  The  calcareous  nannofossil  as-
semblages contain both low-latitude and high-latitude species.
Cold water taxa occur in moderate proportions in most of the
analysed  samples:  Ahmuellerella  octoradiata,  Gartnerago
segmentatum
,  Kamptnerius  magnificus,  Biscutum  constans,
Biscutum magnumPrediscosphaera stoveri, Monomargina-
tus quaternarius
. In contrast, the Tethyan taxa (Uniplanarius
sissinghii, Uniplanarius trifidus
, Uniplanarius gothicus, Cera-
tolithoides aculeus
) are present in low proportions.

The calcareous nannofossil diversity curve displays a peak

just below the red beds where the planktonic foraminifera are
present in high numbers (sample 11). At the base of the red beds

the  calcareous  nannofossil  assemblage  is  dominated  by  cos-
mopolitan  species.  A  drop  in  diversity  and  abundance  has
been observed in the upper part of the section, around the Cam-
panian-Maastrichtian  boundary  (Fig. 3).  The  most  abundant
species  is  Micula  staurophora,  which  locally  can  reach  up  to
87 %.  It  is  followed  by  Watznaueria  barnesiae  (up  to  49 %),
Prediscosphaera cretacea and Reinhardtites anthophorus.

The ratio between Micula  and  Watznaueria has been cal-

culated  as  follows:  3 : 1  in  UC15

c

TP

Zone,  1 : 1  in  UC15

d

TP

UC15

e

TP 

Zones  (except  for  two  samples  where  the  ratio  is

1 : 2), and 6 : 1 in UC16 Zone.

Biostratigraphy

According  to  the  agglutinated  foraminifera,  the  deposits

from the Suceava section can be assigned to the Caudammina
gigantea
 Zone (Fig. 2) of the Early Campanian to Maastrich-
tian  (Olszewska  1981;  Neagu  et  al.  1992;  Olszewska  1997;
Morgiel & Bąk 2004; Cetean et al. 2011). The first occurrence
(FO)  of  Caudammina  gigantea  was  observed  in  sample 15
(lower part of the CC22 Zone of calcareous nannoplankton).
Caudammina gigantea was considered by Kuhnt et al. (1998),
Bąk (2000), and Cetean et al. (2011), as not living above the
middle  bathyal  zone  and  it  seems  that  its  first  occurrence  is
diachronous  along  the  Carpathians.  In  the  Polish  Outer  Car-
pathians,  Olszewska  (1997)  described  an  acme  zone  with
Caudammina gigantea in the Late Santonian to Early Campa-

background image

125

BIOSTRATIGRAPHY AND PALEOENVIRONMENT OF THE UPPER CRETACEOUS DEPOSITS (E CARPATHIANS)

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA, 2013, 64, 2, 117—132

Table 2: Calcareous nannofossil stratigraphical distribution on Suceava section.

Age 

Late Campanian 

Nannofossil zones  
(Sissingh, 1977; Perch-Nielsen,   
1985; Burnett, 1998) 

UC15

c

TP 

/ CC21

 

UC15

d

TP

–UC15

e

TP 

/ CC22

 

UC16/ 

CC23 

Sample 

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10  11  12  13  14  15  16  17  18  19  20  21  22  23 

Preservation 

M  P  M M M  M M M  M  P  M M M M M M M M M M VP  VP  P 

Abundance 

L  L M L  L  L M M 

L L M M L L L M M L M L L L M 

Ahmuellerella octoradiata 

    F   R R  R     F   R R R F R R  R    R 

Ahmuellerella regularis 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Amphizigus brooksii 

          R  R    R   R    

Arkhangelskiella cymbiformis 

R R F R R R F  F R R F  F R R R R F R R R    R R 

Biscutum constans 

R    F R      F      R R F R R R R F R    R      R 

Biscutum ellipticum 

R    R R R F F F F F F F R R R F R R F R R    R 

Biscutum magnum 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Braarudosphaera bigelowii 

 R 

R   R 

R   R    R        

Broinsonia enormis 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Broinsonia parca constricta 

R R R R R R F R R R F R R R R R F R F R R    R 

Broinsonia parca expansa 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Broinsonia parca parca 

R R R R R R R R R R  F  R R R R R  F  R  F  R R    F 

Broinsonia signata 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Calculites obscurus 

R R R R R R          R R R R      R R R R R    R 

Calculites ovalis 

 R 

R   R 

R     R       

Ceratolithoides aculeus 

R  R    R    R  R R R R R R    R R      

Ceratolithoides prominens 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Ceratolithoides sesquipedalis 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Chiastozygus amphipons 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Chiastozygus bifarius 

R        R R R R R    F R R    R R F R F R       

Chiastozygus litterarius 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Cretarhabdus striatus 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Cribrosphaerella ehrenbergii 

R    R R    R R R R R R R R  F  R R R R R R      R 

Cribrocorona gallica 

          R  R 

R   R 

R   

Cylindralithus nieliae 

R      R R R R R R R R R R R R R  F  R R R R    R 

Discorhabdus ignotus 

R    R R      R  R  R R  R R R R  R    

Eiffelithus eximius 

R    R R R R R R R R R  F  R R R  F  F  R  F  R    R   

Eiffelithus gorkae 

   R     R 

R    R        

Eiffelithus turriseiffelii 

     R R R R R  R R  R  R  R R R      R 

Gartnerago segmentatum 

R    F  F R    R R R    F R R R F  F      R R       

Helicolithus anceps 

 R     F  R 

F        R    

Helicolithus trabeculatus 

 R       R  R  R 

R    R 

R    

Kamptnerius magnificus 

F    R R R R R  F    R R    F  F  R R R R    R      R 

Lithastrinus quadricuspis 

                R 

R  R 

Loxolithus armilla 

R        R R R R      R R R R R R    R R R       

Lucianorhabdus maleformis 

R R R R R R R R R R R R R R R R  F  R R R R    R 

Manivitella pemmatoidea 

     R  R        R R R R R  R  R R      

Markalius inversus 

R   R 

R    R  R      R     

Microrhabdulus decoratus 

R      R  R    R F   R R R R R R F         

Micula concava 

      R R R R R R    R    R R R R R R R         

Micula cubiformis 

R   R       R  R   R        

Micula staurophora 

C C C C C C C C C C C C C C C C C C A C C R C 

Micula swastica 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monomarginatus quaternarius 

R    R R R R    R R    R R R R R    R R R         

Octolithus multiplus 

   R     R 

R  R 

R  R 

R      

Orastrum campanensis 

R  R R  R    R  R R  R R R    R R      

Placozygus fibuliformis 

R          R  R 

R   R 

R  R    

Prediscosphaera arkhangelskyi 

R    R R R R R R R R R R R    R R R    R R       

Prediscosphaera cretacea 

F R F R F F F F F R F F F F F F F R F F R R R 

Prediscosphaera grandis 

R R R R R R R R R    R R R R R R    R R R      R 

Prediscosphaera ponticula 

R  R R    R R  R R R  R  R R            

Prediscosphaera spinosa 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Prediscosphaera stoveri 

R  R 

R  F     F 

R    R    R    

Reinhardtites anthophorus 

F R F F R R F F F R F R R F R F F R R R       

Reinhardtites levis 

       R 

R  F    R 

R       R 

Retecapsa angustiforata 

R  R 

R      R      R   R    

Retecapsa crenulata 

R R R R R F R F F R F F F R R F F F  F F R    F 

Retecapsa ficula 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Retecapsa schizobrachiata 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Seribiscutum gaultensis 

R    R    R R R   F   R R    R R F         

Staurolithites imbricatus 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Staurolithites laffittei 

R  R 

R   R 

F   R 

R  R      

Tranolithus minimus 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Tranolithus orionatus 

  R 

R    R 

R  R 

R  R 

R    

Uniplanarius gothicus 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Uniplanarius sissinghii 

R   R       R    R     R 

R  R 

Uniplanarius trifidus 

          R 

R  R 

R  R 

R     R 

Watznaueria barnesiae 

C F F F C F C C F F C C F F F C A C C F F R F 

Watznaueria britannica 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Watznaueria ovata 

R   R  R  R 

R  R        R 

R    

Zeugrhabdotus bicrescenticus 

R        R R R R R    R R R R R R  F  R R    R     

Zeugrhabdotus diplogrammus 

  R 

R    R  R      F 

R      

Zeugrhabdotus embergeri  

R  R R R    R R  R R R  R  R R R R      

Zeugrhabdotus praesigmoides 

R    R            R  R  R  R  R R      

 

background image

126

BINDIU, FILIPESCU and BĂLC

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA, 2013, 64, 2, 117—132

Fig. 7.

background image

127

BIOSTRATIGRAPHY AND PALEOENVIRONMENT OF THE UPPER CRETACEOUS DEPOSITS (E CARPATHIANS)

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA, 2013, 64, 2, 117—132

Fig. 7. Calcareous nannofossils from the Suceava Valley section. The photographs were taken under cross-polarized light. 1 – Arkhangel-
skiella cymbiformis
; Sample 11. 2 – Biscutum constans; Sample 11. 3 – Biscutum magnum; Sample 14.  Broinsonia parca constricta;
Sample 4. 5 – Broinsonia parca parca; Sample 11. 6 – Broinsonia parca expansa; Sample 8. 7 – Broinsonia signata; Sample 16. 8 – Cal-
culites obscurus
; Sample 12. 9 – Ceratolithoides aculeus; Sample 6. 10 – Ceratolithoides prominens; Sample 9. 11 – Ceratolithoides
sesquipedalis
; Sample 6. 12 – Cribrocorona gallica; Sample 14. 13 – Cribrosphaerella ehrenbergii; Sample 7. 14 – Cylindralithus sp.;
Sample 13. 15 – Discorhabdus ignotus; Sample 13. 16 – Eiffelithus eximius; Sample 16. 17 – Eiffelithus turriseiffelii; Sample 8. 18 – Gart-
nerago segmentatum
; Sample 3.  19 –  Helicolithus anceps; Sample 2.  20  – Kamptnerius magnificus; Sample 5.  21  –  Lucianorhabdus
maleformis
; Sample 13. 22 – Manivitella pemmatoidea; Sample 11. 23 – Microrhabdulus decoratus; Sample 7. 24 – Micula staurophora;
Sample 20. 25  Monomarginatus quaternarius; Sample 15. 26 – Orastrum campanensis; Sample 6. 27 – Placozygus fibuliformis; Sam-
ple 13. 28 –  Prediscosphaera arkhangelskyi; Sample 16.  29  Prediscosphaera cretacea; Sample 18. 30 – Prediscosphaera grandis;
Sample 15. 31 – Prediscosphaera stoveri; Sample 6. 32 – Retecapsa crenulata; Sample 11. 33 – Reinhardtites anthophorus; Sample 11.
34 – Tranolithus orionatus; Sample 11. 35 – Uniplanarius sissinghii; Sample 4. 36  Uniplanarius trifidus; Sample 23. 37 – Watznaueria
barnesiae
; Sample 11. 38 – Watznaueria britannica; Sample 11. 39 – Zeugrhabdotus bicrescenticus; Sample 11. 40 – Zeugrhabdotus
diplogrammus
; Sample 11.

nian, while in the Romanian Eastern Carpathians, Neagu et al.
(1992) reported it from the Early Campanian & Cetean et al.
(2011) identified it in the Late Campanian.

Planktonic foraminifera occur only in the basal part of the

section (grey marlstones) with high proportions in samples 4
and  11  (Fig. 2),  where  Globotruncana  arca,  G.  elevata,  G.
angulata
,  G.  orientalis  are  characteristic.  Additionally,  the
presence of Globotruncana ventricosa (FO in sample 1 and a
maximum  in  sample 4)  allows  the  correlation  with  the
Globotruncana  ventricosa  Zone  (e.g.  Postuma  1971;  Caron
1985) of the Late Campanian. The high proportion of Globo-
truncana  arca
  in  sample 11  correlates  with  the  base  of  the
Late  Campanian  and  CC22  Biozone  (defined  between  the
first occurrence of  Uniplanarius  trifidus  and  the  last  occur-
rence (LO) of Reinhardtites anthophorus) of calcareous nan-
noplankton  (Fig. 2).  The  interval  between  samples 11  to  15
contains  foraminifera  with  long  stratigraphic  range  and
therefore can hardly be assigned to a certain planktonic fora-
miniferal  zone;  useful  information  is  given  by  calcareous
nannofossils instead.

According to UC Zones introduced by Burnett (1998), cor-

related  with  the  Tethyan  biozonation  schemes  of  Sissingh
(1977) and Perch-Nielsen (1985), the calcareous nannofossils
are  characteristic  for  the  Late  Cretaceous  (UC15c

TP

—UC16;

CC21—CC23) – Fig. 2. The absence of Uniplanarius trifidus
in  the  basal  part  of  the  section  argues  for  the  presence  of
UC15

c

TP

 Subzone (early Late Campanian). The FO of Unipla-

narius  trifidus  (base  of  UC15

d

TP

  Subzone  –  approximately

early  Late  Campanian  or  base  of  Late  Campanian  CC22
Zone in the Tethyan Realm) was recorded at sample 11, while
the  LO  of Reinhardtites  anthophorus  (base  of  Late  Campa-
nian CC23 Zone or UC16 Zone) was observed in sample 21.
The boundary between UC15

d

TP

—UC15

e

TP

  Subzones  cannot

be  drawn  due  to  the  absence  of  the  marker  species  (Eiffe-
lithus parallelus
). These two subzones can be approximately
correlated  with  CC22  Biozones  of  Sissingh  (1977)  and
Perch-Nielsen  (1985).  Thus,  the  studied  interval  can  be  con-
sidered as Late Campanian in age. Two additional bioevents
have  been  recorded  in  the  UC15

d

TP

—UC15

e

TP

/CC22  Bio-

zone: FO of Biscutum magnum in sample 14 followed by FO
of  Lithastrinus  quadricuspis  at  sample 17  (Late  Campanian
CC22 Zone – Le Callonec et al. 1997). Other Late Campa-
nian  species  constantly  occurring,  but  in  low  proportions  in
the  Hangu  Formation  are  Ceratolithoides  aculeus,  Unipla-

narius sissinghii, Reinhardtites levisOrastrum campanensis,
Monomarginatus quaternarius, Octolithus multiplus.

Discussion and interpretation

The foraminiferal assemblage A is very similar to assem-

blages  described  from  the  Subsilesian  Unit  of  the  Polish
Carpathians (Waśkowska-Oliwa 2005); this correlation sug-
gests that the interval between samples 1 to 14 corresponds
to  an  environment  placed  just  above  calcite  compensation
depth  (CCD). This is consistent with the calcareous nanno-
fossil  diversity  curve  which  displays  a  peak  just  below  the
red  beds  where  the  planktonic  foraminifera  are  present  in  a
high proportion (sample 11).

On  the  basis  of  the  identified  species,  the  foraminiferal

assemblage B  fits  very  well  into  the  “flysch-type”  aggluti-
nated foraminiferal biofacies, characteristic of the middle to
lower  bathyal  settings  (Kaminski  &  Gradstein  2005).  The
lack of planktonic foraminifera and the very rare calcareous
benthics  point  to  a  lower  bathyal  settings,  probably  above
but close to the CCD.

Dominance of the tubular forms (M1 morphorgoup) in the

basal and upper part of the section suggests low energy, mid-
dle to lower bathyal environments with moderate to low levels
of  organic  flux  to  the  sea  bottom;  this  is  confirmed  by  the
low values of the alpha index (Fig. 3).

The decrease in the relative abundance of M1 and increase

of  M4b,  noticed  in  the  red  beds,  suggest  seafloor  distur-
bance,  changes  in  the  circulation  of  the  bottom  waters  and
well-oxygenated oligotrophic conditions on the seafloor (Hu
et al. 2005). This is supported by the relatively higher diver-
sity,  the  abundance  of  epifaunal  and  infaunal  morphotypes
and  the  presence  of  trace  fossils  (Bąk  2000  and  Hu  et  al.
2005).  These  red  shales,  containing  only  deep-water  fora-
minifera  and  showing  an  increase  of  the  species  diversity,
also support the hypothesis of Setoyama et al. (2011) that the
diversity  of  benthic  foraminiferal  assemblages  usually  in-
creases with greater water depth.

Hu  et  al.  (2005)  stated  that  similar  Upper  Cretaceous  de-

posits  formed  in  relation  to  a  major  change  in  the  oceanic
sedimentation starting with mid-Cretaceous. Same kind of de-
posits  was  reported  in  the  Romanian  Eastern  Carpathians  by
Melinte (2002) and Melinte & Jipa (2005) and was assigned to

background image

128

BINDIU, FILIPESCU and BĂLC

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA, 2013, 64, 2, 117—132

the Late Campanian-Maastrichtian CC21—CC26 Nannozones.
A possible explanation of the red colour is a change in redox
conditions on the ocean floor (Hu et al. 2005), low sedimentary
rate and oligotrophy. This is supported by the relatively high
proportion of inbenthic forms.

The differences in the number of cold water vs. Tethyan cal-

careous  nannoplankton  taxa  suggest  a  possible  migration  of
the  high-latitude  boreal  nannoplankton  into  the  Tethyan
Realm.  This  could  be  related  to  the  existence  of  a  corridor
between the Tethyan basins and North European basins dur-
ing the Campanian—Maastrichtian, as suggested by Malata &
Poprawa  (1997).  The  influence  from  the  Boreal  Realm  has
been demonstrated by Švábenická (2001) based on studying
calcareous  nannofossils  in  Upper  Campanian  deposits  from
the Outer Western Carpathians.

Micula  staurophora  (recognized  as  an  abundant  species  in

poorly-preserved samples and reaching the lowest abundance
in well-preserved ones – Eshet & Almogi-Labin 1996) is the
most  abundant  species  throughout  the  section.  It  is  followed
by  Watznaueria  barnesiae,  Prediscosphaera  cretacea  and
Reinhardtites anthophorus. Their high proportions may be re-
lated  to  a  better  resistance  to  dissolution  compared  to  other
taxa. Micula overcoming Watznaueria in most of the samples
can also be interpreted as a cooling episode since Watznaueria
barnesiae  
was  defined  as  a  warm  water  taxon  (Bukry  1973;
Thierstein 1981; Huber & Watkins 1992; Lees 2002 o.a.).

The dominance of the cosmopolitan calcareous nannofos-

sil species at the base of red beds was also noted by Melinte
&  Jipa  (2005)  in  relation  to  a  high  sea  level.  The  relative
abundance of Watznaueria barnesiae in the studied red beds
overcomes Micula staurophora  in two samples (samples 12
and  18  in  Fig. 3)  suggesting  increase  in  paleoproductivity
(the  distribution  of  Watznaueria  barnesiae  usually  shows  a
positive correlation with the productivity curves – Eshet &
Almogi-Labin 1996).

The drop of calcareous nannoplankton diversity and abun-

dance  in  the  upper  part  of  the  section  (Fig. 3)  suggests
changes  in  the  environmental  conditions  (a  regressive  epi-
sode and/or high productivity interval).

Distinct distribution of micro- and nannofossil assemblages

correlates  with  the  sedimentological  data.  The  transgressive
interval can be documented by fining upwards turbidites (T

b-c

followed by T

c-e

) containing mainly agglutinated foraminifera

and afterwards large amounts of planktonics. The hemipelagic
red  beds  must  have  been  deposited  in  even  deeper  settings
(containing  agglutinated  foraminifera  that  lived  below  the
CCD).  The  reactivation  of  turbiditic  sedimentation  after  the
deposition  of  red  beds  demonstrates  the  beginning  of  the  re-
gressive trend. By marking a sea-level maximum, the red beds
and  associated  agglutinated  foraminiferal  assemblage  have  a
high correlation potential for the Late Campanian.

Conclusions

The Suceava section (northern Tarcău Nappe of the East-

ern Carpathians) provided rich foraminiferal and calcareous
nannoplankton  assemblages,  suitable  for  biostratigraphic
and  paleoenvironmental  analyses.  The  data  allow  biostrati-

graphic  correlation  support  for  the  Hangu  Formation,  by
assigning the deposits to the Late Campanian  Caudammina
gigantea 
Zone, Globotruncana ventricosa (foraminifera) and
UC15

c

TP

—UC16 (calcareous nannoplankton) Biozones.

The  foraminiferal  assemblages  are  dominated  by  aggluti-

nated  taxa.  Low  proportions  of  planktonic  and  calcareous
benthic forms in the lower part of the section suggest envi-
ronments  placed  above  the  CCD.  On  the  other  hand,  the
dominance of agglutinated foraminifera and the presence of
calcareous  nannofossils  and  sporadic  forms  of  calcareous
benthic  foraminifera  in  the  median  and  upper  parts  suggest
deposition above the CCD but close to it.

The  character  of  the  foraminiferal  assemblages  is  typical

of “flysch type” biofacies from middle to lower bathyal set-
tings. The morphogroup analysis suggests that for the lower-
most  deposits  the  bottom  water  environments  were
mesotrophic  and  relatively  well  oxygenated.  The  red  beds
display  higher  diversities  and  high  proportions  of  infaunal
forms  suggesting  an  increased  oxygenation,  higher  water
depth, low sedimentation rate and oligotrophic conditions.

Sedimentological and micropaleontological data suggest a

deepening trend up to the level of the red beds, followed by a
regressive trend. The red beds and associated micropaleonto-
logical  assemblage  have  a  high  potential  for  stratigraphic
correlation at regional scale.

Acknowledgments:  Raluca  Bindiu  thanks  the  Grzybowski
Foundation for the financial support provided by “The Brian
J. O’Neill Memorial Student Grant-in-aid for PhD Research
in  Stratigraphic  Micropalaeontology”  and  to  the  Sectoral
Operational Programme for Human Resources Development
2007—2013, co-financed by the European Social Fund, under
the Project number POSDRU/107/1.5/S/76841 with the title
“Modern Doctoral Studies: Internationalization and Interdis-
ciplinarity”.  The  fieldwork  was  funded  S.N.G.N  ROMGAZ
(contract 18/2011).  Ramona  Bălc  thanks  to  CNCSIS-
UEFISCSU, Project PN II-RU_TE_ 313/2010 for the finan-
cial  support.  The  authors  are  grateful  to  Lilian  Švábenická
and the anonymous reviewers for suggestions that improved
the present manuscript.

References

Atanasiu  I.  1939:  Contributions  á  la  Stratigraphie  et  la  tectonique

du  Flysch  marginal  moldave.  Sci.  Ann.  A.I.  Cuza  University,
Ia i XXV/1, 320—327.

Atanasiu I. 1943: Le facies du Flysch marginal dans la partie moy-

enne  des  Carpates  Moldaves.  Yearbook  Roman.  Geol.  Inst.,
Bucharest XXIV, 149—176.

Bąk K. 2000: Biostratigraphy of deep-water agglutinated Foramin-

ifera  in  Scaglia  Rossa-type  deposits  of  the  Pieniny  Klippen
Belt,  Carpathians,  Poland.  In:  Hart  M.B.,  Kaminski  M.A.  &
Smart  C.W.  (Eds.):  Proceedings  of  the  Fifth  International
Workshop on Agglutinated Foraminifera. Grzybowski Found.,
Spec. Publ
. 7, 15—40.

Bąk K. 2004: Deep-water agglutinated foraminiferal changes across the

Cretaceous/Tertiary and Paleocene/Eocene transition in the deep
flysch environment; eastern Carpathians (Bieszczady Mts, Po-
land). Proceedings of the Sixth International Workshop on Agglu-
tinated Foraminifera
Grzybowski Found., Spec. Publ. 8, 1—56.

background image

129

BIOSTRATIGRAPHY AND PALEOENVIRONMENT OF THE UPPER CRETACEOUS DEPOSITS (E CARPATHIANS)

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA, 2013, 64, 2, 117—132

Bindiu R. & Filipescu S. 2011: Agglutinated foraminifera from the

Northern Tarcău Nappe (Eastern Carpathians, Romania). Stud.
Univ. Babe -Bolyai, Geol.
 56, 2, 31—41.

Bojar A.-V., Melinte M.C. & Bojar H.-P. 2009: A continuous Cre-

taceous/Paleogene  red  bed  section  in  the  Romanian  Car-
pathians.  In:  Hu  X.,  Wang  C.,  Scott  R.W.,  Wagreich  M.  &
Jansa  L.  (Eds.):  Cretaceous  Oceanic  Red  Beds:  Stratigraphy,
composition, origins and paleoceanographic, and paleoclimatic
significance. SEPM Spec. Publ. 91, 129—143.

Bouma  A.H.  1962:  Sedimentology  of  some  flysch  deposits;  a

graphic approach to facies interpretation. Elsevier, 1—168.

Bown P.R. & Young J.R. 1998: Introduction. In: Bown P.R. (Ed.):

Calcareous  nannofossil  biostratigraphy.  British  Micropaleont.
Soc. Ser., Chapman & Hall
, London, 1—15.

Bukry D. 1973: Coccolith and silicoflagellate stratigraphy, Tasman

Sea and southwestern Pacific Ocean, Deep Sea Drilling Project
Leg.  21.  Initial  Reports  of  the  Deep  Sea  Drilling  Project  21,
885—893.

Burnett J.A. 1998: Upper Cretaceous. In: Bown P.R. (Ed.): Calcare-

ous nannofossil biostratigraphy. British Micropaleont. Soc. Ser.,
Chapman & Hall
, London, 132—199.

Caron M. 1985: Cretaceous planktonic foraminifera. In: Bolli H.M.,

Saunders J.B. & Perch-Nielsen K. (Eds.): Plankton stratigraphy.
Cambridge University Press, 17—86.

Cetean C., Balc R., Kaminski M.A. & Filipescu S. 2011: Integrated

biostratigraphy and palaeoenvironments of an upper Santonian—
upper Campanian succession from the southern part of the East-
ern Carpathians, Romania. Cretaceous Research 32, 575—590.

Eshet Y. & Almogi-Labin A. 1996: Calcareous nannofossil as paleo-

productivity  indicators  in  Upper  Cretaceous  organic-rich  se-
quences in Israel. Mar. Micropaleont. 29, 37—61.

Fisher  R.A.,  Corbet  A.S.  &  Williams  C.B.  1943:  The  relationship

between the number of species and the number of individuals
in a random sample of an animal population. J. Animal Ecology
12, 42—58.

Goeury C. 1997: GpalWin: gestion, traitement et représentation de

la paléoécologie. XV-

e

me Symposium de l’APLF (Association

des  Palynologues  de  Langue  Française),  Université  Claude
Bernard
, Lyon, 1—31.

Hoelzel M. 2004: StratDraw: automatic generation of stratigraphic

sections from tabulated field data. Computers and Geosciences
30, 7, 785—789.

Hu  X.,  Jansa  L.,  Wang  C.,  Sardid  M.,  Bąk  K.,  Wagreich  M.,

Michalík  J.  &  Soták  J.  2005:  Upper  Cretaceous  oceanic  red
beds (CORBs) in the Tethys: occurrences, lithofacies, age, and
environments. Cretaceous Research 26, 3—20.

Huber  B.T.  &  Watkins  D.K.  1992:  Biogeography  of  Campanian-

Maastrichtian calcareous plankton in the region of the Southern
Ocean:  paleogeographic  and  paleoclimatic  implications.  In:
The Antarctic paleoenvironment: a perspective on global change.
Antarctic Research Series 56, 31—60.

Ion J., Antonescu E. & Alexandrescu G. 1995: Contribution to the

stratigraphy  of  the  Upper  Cretaceous  and  Paleocene  in  the
northern part of the Tarcău Nappe (East Carpathians). Roman.
J. Stratigraphy
 76, 25—59.

Joja  T.  1954:  Geological  structure  of  the  marginal  flysch  along

Putni oara  Valley  and  in  the  lower  course  of  Putna  River.
Records of the Geological Committee 38, 183—228.

Joja T., Mutihac V., Alexandrescu Gr. & Bercia I. 1968: Geological

Map  of  Romania,  Rădău i  sheet  1 : 200,000.  State  Geological
Committee
, Bucharest.

Juravle D.T. 2007: Geology of the area between Suceava and Putna

Valleys (Eastern Carpathians). Demiurg Publishing House, Ia i,
1—319.

Kaminski  M.A.,  Gradstein  F.M.  (Eds.),  Bäckström  S.,  Berggren

W.A., Bubík M., Carvajal—Chitty H., Filipescu S., Geroch S.,

Jones  D.S.,  Kuhnt  W.,  McNeil  D.H.,  Nagy  J.,  Platon  E.,
Ramesh P., Rögl F., Thomas F.C., Whittaker J.E. & Yakovleva—
O’Neil  S.  2005:  Atlas  of  Paleogene  cosmopolitan  deep-water
agglutinated foraminifera. Grzybowski Found., 1—547.

Kuhnt  W.,  Moullade  M.  &  Kaminski  M.A.  1998:  Upper  Creta-

ceous, K/T boundary, and Paleocene agglutinated foraminifers
from  Hole  959D  (Côte  d’Ivoire  e  Ghana  transform  Margin).
Proceedings of the Ocean Drilling ProgramScientific Results
159, 389—411.

Le Callonec L., Gardin S., Galbrun G., Renard M., Bellier J.-P. &

Razin  P.  1997:  New  data  of  the  Upper  Campanian  section  of
the Baie de Loya (Pirénées-Atlantiques, France): biostratigraphy
and  magnetostratigraphy  studies.  Earth  and  Planet.  Sci.  325,
351—357.

Lees J.A. 2002: Calcareous nannofossil biogeography illustrates pa-

leoclimate change in the Late Cretaceous Indian Ocean. Creta-
ceous Research
 23, 537—634.

Li L.Q., Keller G., Adatte T. & Stinnesbeck W. 2000: Late Creta-

ceous  sea-level  changes  in  Tunisia:  a  multi-disciplinary  ap-
proach. J. Geol. Soc. London 157, 447—458.

Lüning  S.,  Marzouk  A.M.,  Morsi  A.M.  &  Kuss  J.  1998:  Sequence

stratigraphy of the Upper Cretaceous of south-east Sinai, Egypt.
Cretaceous Research 19, 153—196.

Małata T. & Poprawa P. 1997: Subsidence and uplift analysis of the

Polish part of Outer Carpathian basins – back stripping of re-
constructed  profiles  of  the  basin-fill.  In:  Krobicki  M.  &
Zuchiewicz W. (Eds.): Dynamics of the Pannonian-Carpathian-
Dinaride System. Przegl. Geol. 45, 10, 1088—1089.

Melinte  M.C.  2002:  Campanian-Maastrichtian  marine  red  beds  in

the Romanian Carpathians. Inaugural Workshop of IGCP 463,
Ancona, Italy. Programme and Abstracts
, 1—18.

Melinte M.C. & Bubík M. 2005: Paleoceanographic implications of

Upper Cretaceous red bed deposition. Case study: The Eastern
Carpathians. Abstr. Book 7th International Cretaceous Sympo-
sium
, Neuchatel, 138—139.

Melinte M.C. & Jipa D. 2005: Campanian-Maastrichtian marine red

beds  in  Romania:  biostratigraphic  and  genetic  significance.
Cretaceous Research 26, 49—56.

Melinte  M.C.,  Brustur  T.,  Jipa  D.  &  Szobotka  S.A.  2007:  Upper

Cretaceous  Marine  Red  Beds  in  the  Eastern  Carpathians:  Re-
sponse  to  oceanic/climate  global  changes.  Eikon  Press,  Cluj-
Napoca, 1—250.

Morgiel J. & Olszewska B. 1981: Biostratigraphy of the Polish ex-

ternal Carpathians based on agglutinated foraminifera. Micro-
paleontology
 27, 1, 1—24.

Murray J. 2006: Ecology and applications of benthic foraminifera.

Cambrige University Press, 1—462.

Murray J., Alve E. & Jones B. 2011: A new look at modern aggluti-

nated  benthic  foraminiferal  morphogroups:  their  value  in
palaeoecological  interpretation.  Palaeogeogr.  Palaeoclimatol.
Palaeoecol.
 309, 229—241.

Mutihac V. & Ionesi L. 1974: The geology of Romania. Technical

Publishing, Bucharest, 267—295 (in Romanian).

Nagy  J.,  Gradstein  F.M.,  Kaminski  M.A.  &  Holbourn  A.E.  1995:

Foraminiferal morphogroups, paleoenvironments and new taxa
from Jurassic to Cretaceous strata of 41Thakkhola, Nepal. In:
Kaminski M.A., Geroch S. & Gasinski M.A. (Eds.): Proceed-
ings  of  the  Fourth  International  Workshop  on  Agglutinated
Foraminifera. Grzybowski Found., Spec. Publ. 3, 181—209.

Neagu  T.  1970:  Micropaleontological  and  stratigraphical  study  of

the Upper Cretaceous deposits between the upper valleys of the
Buzău  and  Rîul  Negru  Rivers  (Eastern  Carpathians).  Inst.
Géol. Mém
. 12, 1—109.

Neagu  T.  1990:  Gerochammina  n.g.  and  related  genera  from  the

Upper  Cretaceous  flysch-type  benthic  foraminiferal  fauna,
Eastern Carpathians – Romania. In: Hemleben C. et al. (Eds.):

è

 

background image

130

BINDIU, FILIPESCU and BĂLC

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA, 2013, 64, 2, 117—132

Paleoecology, biostratigraphy, paleoceanography and taxonomy
of  agglutinated  foraminifera.  NATOASI  Series  C-327,  Kluwer
Academic Publishers
, 245—265.

Neagu T., Platon E., Dumitrescu G. & Selea A. 1992: The biostrati-

graphical significance of agglutinated foraminifera in the East-
ern Carpathians (Upper Cretaceous).  Annales of University of
Bucharest
 15—16, 45—49.

Olszewska  B.  1997:  Foraminiferal  biostratigraphy  of  the  Polish

Outer  Carpathians:  a  record  of  basin  geohistory.  Ann.  Soc.
Geol. Pol., 
Krakow 67, 2—3, 325—337.

Perch-Nielsen K. 1985: Cenozoic calcareous nannofossils. In: Bolli

H.M.,  Saunders  J.B.  &  Perch-Nielsen  K.  (Eds.):  Plankton
stratigraphy. Cambridge University Press, 427—554.

Postuma  J.A.  1971:  Manual  of  planktonic  foraminifera.  Elsevier

Publishing Co, Amsterdam, 1—420.

Ryan P.D., Harper D.A.T. & Whalley J.S. 1995: PALSTAT, Statis-

tics  for  paleontologists.  User’s  manual  and  case  histories.
Chapman & Hall, London, 1—133.

Săndulescu M. 1984: Geotectonics of Romania. Technical Publish-

ing, Bucharest, 1—334 (in Romanian).

Setoyama  E.,  Kaminski  M.A.  &  Tyszka  J.  2011:  The  Late  Creta-

Agglutinated foraminifera

Ammobaculites sp.
Ammodiscus cretaceus (Reuss, 1845)
Ammodiscus glabratus Cushman & Jarvis, 1928
Ammodiscus peruvianus Berry, 1928
Ammodiscus tenuissimus Grzybowski, 1898
Ammosphaeroidina pseudopauciloculata (Mjatliuk, 1966)
Arthrodendron grandis (Grzybowski, 1898)
Bathysiphon sp.
Caudammina ovula (Grzybowski, 1896)
Caudammina ovuloides (Grzybowski, 1901)
Caudammina gigantea (Geroch, 1960)
Conglophragmium irregularis (White, 1928)
Cribrostomoides subglobosus (Cushman, 1910)
Cribrostomoides sp.
Glomospira charoides (Jones & Parker, 1860)
Glomospira gordialis (Jones & Parker, 1860)
Glomospira irregularis (Grzybowski, 1898)
Glomospira serpens (Grzybowski, 1898)
Glomospira sp.
Haplophragmoides kirki Wickenden, 1932
Hormosina trinitatensis Cushman & Renz, 1946
Hormosina velascoensis (Cushman, 1926)
Hormosinella distans (Brady, 1881)
Hyperammina dilatata Grzybowski1896
Hyperammina elongata Brady, 1878
Hyperammina granulosa (Brady, 1879)
Hyperammina rugosa Verdenius & van Hinte, 1983
Hyperammina sp.
Kalamopsis grzybowski (Dylążanka, 1923)
Karrerulina conversa (Grzybowski, 1901)

Appendix 1

List of identified foraminiferal taxa

Karrerulina horrida (Mjatliuk, 1970)
Karrerulina sp.
Lituotuba lituiformis (Brady, 1879)
Nothia  excelsa  (Grzybowski,  1898)  emend.  Geroch  &

Kaminski, 1992

Nothia latissima (Grzybowski, 1898)
Nothia robusta (Grzybowski, 1898)
Paratrochamminoides gorayskii (Grzybowski, 1898) emend.

Kaminski & Geroch, 1993

Paratrochamminoides heteromorphus (Grzybowski, 1898)
Paratrochamminoides mitratus (Grzybowski, 1901)
Paratrochamminoides olszewskii (Grzybowski, 1898)
Psammosiphonella cylindrica (Glaessner, 1937)
Psammosiphonella discreta (Brady, 1881)
Psammosphaera  fusca  Schultze,  1875  emend.  Heron—Allen

& Earland, 1913

Psammosphaera irregularis (Grzybowski, 1896)
Rectoprotomarssonella rugosa (Hanzlíková, 1955)
Recurvoides anormis Mjatliuk, 1970
Recurvoides sp.
Reophax duplex 
Grzybowski, 1896
Reophax globosus Sliter, 1968
Reophax pilulifer Brady, 1884
Reophax subfusiformis Earland, 1933 emend. Höglund, 1947
Reophax sp.
Rhabdammina linearis Brady, 1879
Rhabdammina sp.
Rhizammina sp.
Rzehakina epigona (Rzehak, 1895)
Rzehakina lata Cushman & Jarvis, 1928

ceous—Early Paleocene palaeobathymetric trends in the south-
western  Barents  Sea  –  Palaeoenvironmental  implications  of
benthic  foraminiferal  assemblage  analysis.  Palaeogeogr.
Palaeoclimatol. Palaeoecol.
 307, 1—4, 44—58.

Sissingh W. 1977: Biostratigraphy of Cretaceous calcareous nanno-

plankton. Geol. En. Mijnb., Den Haag 56, 37—65.

Švábenická L. 2001: Late Campanian/Late Maastrichtian penetration

of high-latitude calcareous nannoflora to the Outer Western Car-
pathian depositional area. Geol. Carpathica 52, 1, 23—40.

Thierstein  H.R.  1981:  Late  Cretaceous  nannoplankton  and  the

change  at  the  Cretaceous-Tertiary  boundary.  In:  Warme  J.E.,
Douglas R.G. & Winterer E.L. (Eds.): The Deep Sea Drilling
Project: a decade of progress. Soc. Econ. Paleontologists and
Mineralogists, Spec. Publ.
 32, 355—394.

Van  Der  Akker  T.,  Kaminski  M.A.,  Gradstein  F.M.  &  Wood  J.

2000: Campanian to Palaeocene biostratigraphy and palaeoen-
vironments in the Foula Basin, west of Shetland Islands. J. Mi-
cropalaeont.
 19, 23—43.

Waśkowska-Oliwa  A.  2005:  Foraminiferal  palaeodepth  indicators

from  the  lower  Palaeogene  deposits  of  the  Subsilesian  Unit
(Polish Outer Carpathians). Stud. Geol. Pol. 124, 297—324.

background image

131

BIOSTRATIGRAPHY AND PALEOENVIRONMENT OF THE UPPER CRETACEOUS DEPOSITS (E CARPATHIANS)

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA, 2013, 64, 2, 117—132

Saccammina grzybowski (Schubert, 1902)
Saccammina placenta (Grzybowski, 1898)
Spiroplectammina sp.
Spiroplectinella dentata (Alth, 1850)
Subreophax pseudoscalaris (Samuel, 1977)
Subreophax scalaris (Grzybowski, 1896)
Trochamminoides dubius (Grzybowski, 1901)
Trochamminoides proteus (Karrer, 1866) emend. Rögl, 1995
Trochamminoides subcoronatus (Grzybowski, 1896)
Trochamminoides variolarius (Grzybowski, 1898)

Calcareous benthic foraminifera

Chrysalogonium elongatum Cushman & Jarvis, 1934
Cibicidoides velascoensis (Cushman, 1925)

Appendix 2

List of identified calcareous nannoplankton taxa

Eponides praemegastomus (Mjatliuk, 1953)
Stillostomella sp.

Planktonic foraminifera

Contusotruncana fornicata (Plummer, 1931)
Globotruncana angulata Tilev, 1951
Globotruncana arca (Cushman, 1926)
Globotruncana bulloides Vogler, 1941
Globotrunana concavata (Brotzen, 1934)
Globotruncana elevata (Brotzen, 1934)
Globotruncana orientalis El Naggar, 1966
Globotruncana stuartiformis Dalbiez, 1955
Globotruncana ventricosa White, 1928
Globotruncana sp.

Ahmuellerella octoradiata (Górka, 1957) Reinhardt, 1966
Ahmuellerella  regularis  (Górka,  1957)  Reinhardt  &  Górka,

1967

Amphizigus brooksii Bukry, 1969
Arkhangelskiella cymbiformis Vekshina, 1959
Biscutum  constans  (Górka,  1957)  Black,  1959  in  Black  &

Barnes, 1959

Biscutum ellipticum (Górka, 1957) Grün in Grün & Allemann,

1975

Biscutum magnum Wind & Wise in Wise & Wind, 1977
Braarudosphaera bigelowii (Gran & Braarud, 1935) Deflandre,

1947

Broinsonia enormis (Shumenko, 1968) Manivit, 1971
Broinsonia parca (Stradner, 1963) Bukry, 1969, ssp. constricta

Hattner et al., 1980

Broinsonia parca (Stradner, 1963) Bukry, 1969, ssp. expansa

Wise & Watkins in Wise, 1983

Broinsonia parca (Stradner, 1963) Bukry, 1969, ssp. parca
Broinsonia signata 
(Noël, 1969) Noël, 1970
Calculites ovalis (Stradner, 1963) Prins & Sissingh in Sissingh,

1977

Calculites  obscurus  (Deflandre,  1959)  Prins  &  Sissingh  in

Sissingh, 1977

Ceratolithoides aculeus (Stradner, 1961) Prins & Sissingh in

Sissingh 1977

Ceratolithoides prominens Burnett, 1997
Ceratolithoides sesquipedalis Burnett, 1998
Chiastozygus amphipons (Bramlette & Martini, 1964) Gartner,

1968

Chiastozygus bifarius Bukry, 1969
Chiastozygus litterarius (Górka, 1957) Manivit, 1971
Cretarhabdus striatus (Stradner, 1963) Black, 1973

Cribrocorona gallica (Stradner, 1963) Perch-Nielsen, 1973
Cribrosphaerella ehrenbergii  (Arkhangelsky, 1912) Deflandre

in Pivetteau, 1952

Cylindralithus nieliae Burnett, 1998
Discorhabdus ignotus (Górka, 1957) Perch-Nielsen, 1968
Eiffelithus eximius (Stover, 1966) Perch-Nielsen, 1968
Eiffelithus gorkae Reinhardt, 1965
Eiffelithus  turriseiffelii  (Deflandre  in  Deflandre  &  Fert,

1954) Reinhardt, 1965

Gartnerago segmentatum (Stover, 1966) Thierstein, 1974
Helicolithus anceps (Górka, 1957) Noël, 1970
Helicolithus trabeculatus (Górka, 1957) Verbeek, 1977
Kamptnerius magnificus Deflandre, 1959
Lithastrinus quadricuspis Farhan, 1987
Loxolithus armilla (Black in Black & Barnes, 1959) Noël, 1965
Lucianorhabdus maleformis Reinhardt, 1966
Manivitella pemmatoidea (Deflandre in Manivit, 1965) Thier-

stein, 1971

Markalius  inversus  (Deflandre  in  Deflandre  &  Fert,  1954)

Bramlette & Martini, 1964

Microrhabdulus decoratus Deflandre, 1959
Micula concava (Stradner in Martini & Stradner, 1960) Ver-

beek, 1976

Micula cubiformis Forchheimer, 1972
Micula staurophora (Gardet, 1955) Stradner, 1963
Micula swastica Stradner & Steinmetz, 1984
Monomarginatus  quaternarius  Wind  &  Wise  in  Wise  &

Wind, 1977

Octolithus multiplus (Perch-Nielsen, 1973) Romein, 1979
Orastrum campanensis (Cepek, 1970) Wind & Wise in Wise

& Wind, 1977

Placozygus fibuliformis (Reinhardt, 1964) Hoffmann, 1970

background image

132

BINDIU, FILIPESCU and BĂLC

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA

GEOLOGICA CARPATHICA, 2013, 64, 2, 117—132

Prediscosphaera  arkhangelskyi  (Reinhardt,  1965)  Perch-

Nielsen, 1984

Prediscosphaera cretacea (Arkhangelsky, 1912) Gartner, 1968
Prediscosphaera grandis Perch-Nielsen, 1979
Prediscosphaera  ponticula  (Bukry,  1969)  Perch-Nielsen,

1984

Prediscosphaera spinosa (Bramlette & Martini, 1964) Gartner,

1968

Prediscosphaera  stoveri  (Perch-Nielsen,  1968)  Shafik  &

Stradner, 1971

Reinhardtites anthophorus (Deflandre, 1959) Perch-Nielsen,

1968

Reinhardtites levis Prins & Sissingh in Sissingh, 1977
Retecapsa angustiforata Black, 1971
Retecapsa  crenulata  (Bramlette  &  Martini,  1964)  Grün  in

Grün & Allemann, 1975

Retecapsa ficula (Stover, 1966) Burnett, 1998
Retecapsa  schizobrachiata  (Gartner  1968)  Grün  in  Grün  &

Allemann 1975

Seribiscutum gaultensis Mutterlose, 1992
Staurolithites imbricatus (Gartner, 1968) Burnett, 1998
Staurolithites laffittei Caratini, 1963
Tranolithus minimus (Bukry, 1969) Perch-Nielsen, 1984
Tranolithus orionatus (Reinhardt, 1966a) Reinhardt, 1966
Uniplanarius  gothicus  (Deflandre,  1959)  Hattner  &  Wise,

1980

Uniplanarius sissinghii Perch-Nielsen, 1986
Uniplanarius  trifidus  (Stradner  in  Stradner  &  Papp,  1961)

Hattner & Wise, 1980

Watznaueria barnesiae (Black, 1959) Perch-Nielsen, 1968
Watznaueria britannica (Stradner, 1963) Reinhardt, 1964
Watznaueria ovata Bukry, 1969
Zeugrhabdotus  bicrescenticus  (Stover,  1966)  Burnett  in

Gale et al., 1996

Zeugrhabdotus  diplogrammus  (Deflandre  in  Deflandre  &

Fert, 1954) Burnett in Gale et al., 1996

Zeugrhabdotus embergeri (Noël, 1958) Perch-Nielsen, 1984
Zeugrhabdotus praesigmoides Burnett, 1998